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Sustainable Development Goals
03 Saúde e Bem-EstarCollections
- IOC - Artigos de Periódicos [12819]
Metadata
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RAPAMYCIN IMPROVES THE RESPONSE OF EFFECTOR AND MEMORY CD8+ T CELLS INDUCED BY IMMUNIZATION WITH ASP2 OF TRYPANOSOMA CRUZI
Vacina
Trypanosoma cruzi
Células T CD8+
mTOR
Célula T Effector CD8+
Memória CD8+ células T
mTOR
CD8+ T-cells
Vaccine
Trypanosoma cruzi
Effector CD8+ T cell
Memory CD8+ T cells
Author
Affilliation
Universidade Federal de São Paulo. Centro de Terapia Molecular e Celular. Laboratório de Imunologia Molecular. São Paulo, SP, Brasil / Universidade Federal de São Paulo. Departamento de Microbiologia, Imunologia e Parasitologia. São Paulo, SP, Brasil.
Universidade Federal de São Paulo. Centro de Terapia Molecular e Celular. Laboratório de Imunologia Molecular. São Paulo, SP, Brasil / Universidade Federal de São Paulo. Departamento de Microbiologia, Imunologia e Parasitologia. São Paulo, SP, Brasil.
Universidade Federal de São Paulo. Centro de Terapia Molecular e Celular. Laboratório de Imunologia Molecular. São Paulo, SP, Brasil / Universidade Federal de São Paulo. Departamento de Microbiologia, Imunologia e Parasitologia. São Paulo, SP, Brasil.
Universidade Federal de São Paulo. Departamento de Biociências. Laboratório de Vacinas Recombinantes. Santos, SP, Brasil.
Universidade Federal de São Paulo. Departamento de Biociências. Laboratório de Vacinas Recombinantes. Santos, SP, Brasil.
Universidade Federal de São Paulo. Centro de Terapia Molecular e Celular. Laboratório de Imunologia Molecular. São Paulo, SP, Brasil.
Universidade Federal de São Paulo. Departamento de Farmacologia. S]ao Paulo, SP, Brasil.
Universidade Federal de São Paulo. Departamento de Farmacologia. S]ao Paulo, SP, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas René Rachou. Belo Horizonte, MG, Brasil / University of Massachusetts Medical School. Department of Medicine. Division of Infectious Disease and Immunology. Worcester, MA, USA.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Biologia das Interações. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal de São Paulo. Centro de Terapia Molecular e Celular. Laboratório de Imunologia Molecular. São Paulo, SP, Brasil / Universidade Federal de São Paulo. Departamento de Microbiologia, Imunologia e Parasitologia. São Paulo, SP, Brasil.
Universidade Federal de São Paulo. Centro de Terapia Molecular e Celular. Laboratório de Imunologia Molecular. São Paulo, SP, Brasil / Universidade Federal de São Paulo. Departamento de Farmacologia. S]ao Paulo, SP, Brasil.
Universidade Federal de São Paulo. Centro de Terapia Molecular e Celular. Laboratório de Imunologia Molecular. São Paulo, SP, Brasil / Universidade Federal de São Paulo. Departamento de Microbiologia, Imunologia e Parasitologia. São Paulo, SP, Brasil / Universidade Federal de São Paulo. Departamento de Biociências. Laboratório de Vacinas Recombinantes. Santos, SP, Brasil.
Universidade Federal de São Paulo. Centro de Terapia Molecular e Celular. Laboratório de Imunologia Molecular. São Paulo, SP, Brasil / Universidade Federal de São Paulo. Departamento de Microbiologia, Imunologia e Parasitologia. São Paulo, SP, Brasil.
Universidade Federal de São Paulo. Centro de Terapia Molecular e Celular. Laboratório de Imunologia Molecular. São Paulo, SP, Brasil / Universidade Federal de São Paulo. Departamento de Microbiologia, Imunologia e Parasitologia. São Paulo, SP, Brasil.
Universidade Federal de São Paulo. Departamento de Biociências. Laboratório de Vacinas Recombinantes. Santos, SP, Brasil.
Universidade Federal de São Paulo. Departamento de Biociências. Laboratório de Vacinas Recombinantes. Santos, SP, Brasil.
Universidade Federal de São Paulo. Centro de Terapia Molecular e Celular. Laboratório de Imunologia Molecular. São Paulo, SP, Brasil.
Universidade Federal de São Paulo. Departamento de Farmacologia. S]ao Paulo, SP, Brasil.
Universidade Federal de São Paulo. Departamento de Farmacologia. S]ao Paulo, SP, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas René Rachou. Belo Horizonte, MG, Brasil / University of Massachusetts Medical School. Department of Medicine. Division of Infectious Disease and Immunology. Worcester, MA, USA.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Biologia das Interações. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal de São Paulo. Centro de Terapia Molecular e Celular. Laboratório de Imunologia Molecular. São Paulo, SP, Brasil / Universidade Federal de São Paulo. Departamento de Microbiologia, Imunologia e Parasitologia. São Paulo, SP, Brasil.
Universidade Federal de São Paulo. Centro de Terapia Molecular e Celular. Laboratório de Imunologia Molecular. São Paulo, SP, Brasil / Universidade Federal de São Paulo. Departamento de Farmacologia. S]ao Paulo, SP, Brasil.
Universidade Federal de São Paulo. Centro de Terapia Molecular e Celular. Laboratório de Imunologia Molecular. São Paulo, SP, Brasil / Universidade Federal de São Paulo. Departamento de Microbiologia, Imunologia e Parasitologia. São Paulo, SP, Brasil / Universidade Federal de São Paulo. Departamento de Biociências. Laboratório de Vacinas Recombinantes. Santos, SP, Brasil.
Abstract
Deficiency in memory formation and increased immunosenescence are pivotal features of
Trypanosoma cruzi infection proposed to play a role in parasite persistence and disease
development. The vaccination protocol that consists in a prime with plasmid DNA followed
by the boost with a deficient recombinant human adenovirus type 5, both carrying the
ASP2 gene of T. cruzi, is a powerful strategy to elicit effector memory CD8+ T-cells against
this parasite. In virus infections, the inhibition of mTOR, a kinase involved in several
biological processes, improves the response of memory CD8+ T-cells. Therefore, our aim
was to assess the role of rapamycin, the pharmacological inhibitor of mTOR, in CD8+ T
response against T. cruzi induced by heterologous prime-boost vaccine. For this purpose,
C57BL/6 or A/Sn mice were immunized and daily treated with rapamycin for 34 days.
CD8+ T-cells response was evaluated by immunophenotyping, intracellular staining,
ELISpot assay and in vivo cytotoxicity. In comparison with vehicle-injection, rapamycin
administration during immunization enhanced the frequency of ASP2-specific CD8+ T cells and the percentage of the polyfunctional population, which degranulated (CD107a+
)
and secreted both interferon gamma (IFNg) and tumor necrosis factor (TNF). The beneficial
effects were long-lasting and could be detected 95 days after priming. Moreover, the
effects were detected in mice immunized with ten-fold lower doses of plasmid/adenovirus.
Additionally, the highly susceptible to T. cruzi infection A/Sn mice, when immunized with
low vaccine doses, treated with rapamycin, and challenged with trypomastigote forms of
the Y strain showed a survival rate of 100%, compared with 42% in vehicle-injected group.
Trying to shed light on the biological mechanisms involved in these beneficial effects on
CD8+ T-cells by mTOR inhibition after immunization, we showed that in vivo proliferation
was higher after rapamycin treatment compared with vehicle-injected group. Taken together, our data provide a new approach to vaccine development against intracellular
parasites, placing the mTOR inhibitor rapamycin as an adjuvant to improve effective CD8+
T-cell response.
Keywords in Portuguese
RapamicinaVacina
Trypanosoma cruzi
Células T CD8+
mTOR
Célula T Effector CD8+
Memória CD8+ células T
Keywords
RapamycinmTOR
CD8+ T-cells
Vaccine
Trypanosoma cruzi
Effector CD8+ T cell
Memory CD8+ T cells
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