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- IOC - Artigos de Periódicos [12712]
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GLUCAGON REDUCES NEUTROPHIL MIGRATION AND INCREASES SUSCEPTIBILITY TO SPESIS DIABETIC MICE
Author
Insuela, Daniella Bianchi Reis
Ferrero, Maximiliano Ruben
Albuquerque, Cassiano Felippe Gonçalves de
Chaves, Amanda da Silva
Silva, Adriano Yagho Oliveira da
Faria Neto, Hugo Caire Castro
Simões, Rafael Loureiro
Barja-Fidalgo, Thereza Christina
Silva, Patricia Machado Rodrigues e
Martins, Marco Aurélio
Silva, Adriana Ribeiro
Carvalho, Vinicius Frias
Ferrero, Maximiliano Ruben
Albuquerque, Cassiano Felippe Gonçalves de
Chaves, Amanda da Silva
Silva, Adriano Yagho Oliveira da
Faria Neto, Hugo Caire Castro
Simões, Rafael Loureiro
Barja-Fidalgo, Thereza Christina
Silva, Patricia Machado Rodrigues e
Martins, Marco Aurélio
Silva, Adriana Ribeiro
Carvalho, Vinicius Frias
Affilliation
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Inflamação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Inflamação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunofarmacologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Universidade Federal do Estado do Rio de Janeiro. Instituto Biomédico. Laboratório de Imunofarmacologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Inflamação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunofarmacologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunofarmacologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Neuroimunomodulação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade do Estado do Rio de Janeiro. Instituto de Biologia Roberto Alcantara Gomes. Laboratorio de Farmacoligia Celular e Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade do Estado do Rio de Janeiro. Instituto de Biologia Roberto Alcantara Gomes. Laboratorio de Farmacoligia Celular e Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Inflamação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Inflamação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunofarmacologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Neuroimunomodulação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Inflamação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Neuroimunomodulação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Inflamação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunofarmacologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Universidade Federal do Estado do Rio de Janeiro. Instituto Biomédico. Laboratório de Imunofarmacologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Inflamação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunofarmacologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunofarmacologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Neuroimunomodulação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade do Estado do Rio de Janeiro. Instituto de Biologia Roberto Alcantara Gomes. Laboratorio de Farmacoligia Celular e Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade do Estado do Rio de Janeiro. Instituto de Biologia Roberto Alcantara Gomes. Laboratorio de Farmacoligia Celular e Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Inflamação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Inflamação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunofarmacologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Neuroimunomodulação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Inflamação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Neuroimunomodulação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Abstract
Sepsis is one of the most common comorbidities observed in diabetic patients,
associated with a deficient innate immune response. Recently, we have shown that
glucagon possesses anti-inflammatory properties. In this study, we investigated if
hyperglucagonemia triggered by diabetes might reduce the migration of neutrophils,
increasing sepsis susceptibility. 21 days after diabetes induction by intravenous injection
of alloxan, we induced moderate sepsis in Swiss-Webster mice through cecum ligation
and puncture (CLP). The glucagon receptor (GcgR) antagonist des-his1-[Glu9]-glucagon
amide was injected intraperitoneally 24h and 1h before CLP. We also tested the effect of
glucagon on CXCL1/KC-induced neutrophil migration to the peritoneal cavity in mice.
Neutrophil chemotaxis in vitro was tested using transwell plates, and the expression of
total PKA and phospho-PKA was evaluated by western blot. GcgR antagonist restored
neutrophil migration, reduced CFU numbers in the peritoneal cavity and improved survival
rate of diabetic mice after CLP procedure, however, the treatment did no alter
hyperglycemia, CXCL1/KC plasma levels and blood neutrophilia. In addition, glucagon
inhibited CXCL1/KC-induced neutrophil migration to the peritoneal cavity of non-diabetic
mice. Glucagon also decreased the chemotaxis of neutrophils triggered by CXCL1/KC,
PAF, or fMLP in vitro. The inhibitory action of glucagon occurred in parallel with the
reduction of CXCL1/KC-induced actin polymerization in neutrophils in vitro, but not
CD11a and CD11b translocation to cell surface. The suppressor effect of glucagon on
CXCL1/KC-induced neutrophil chemotaxis in vitro was reversed by pre-treatment with
GcgR antagonist and adenylyl cyclase or PKA inhibitors. Glucagon also increased PKA
phosphorylation directly in neutrophils in vitro. Furthermore, glucagon impaired zymosanA-induced ROS production by neutrophils in vitro. Human neutrophil chemotaxis and
adherence to endothelial cells in vitro were inhibited by glucagon treatment. According to
our results, this inhibition was independent of CD11a and CD11b translocation to
neutrophil surface or neutrophil release of CXCL8/IL-8. Altogether, our results suggest
that glucagon may be involved in the reduction of neutrophil migration and increased
susceptibility to sepsis in diabetic mice. This work collaborates with better understanding
of the increased susceptibility and worsening of sepsis in diabetics, which can contribute
to the development of new effective therapeutic strategies for diabetic septic patients.
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