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2300-01-01
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COMPARAÇÃO DA ACURÁCIA ENTRE AS TÉCNICAS DE HIBRIDIZAÇÃO IN SITU COLORIMÉTRICA, HISTOPATOLOGIA, IMUNO-HISTOQUÍMICA E QPCR PARA DIAGNÓSTICO DE LEISHMANIOSE TEGUMENTAR AMERICANA CAUSADA POR LEISHMANIA BRAZILIENSIS EM AMOSTRAS DE PELE
Diagnóstico
Hibridização in situ
Imuno-peroxidase
Imuno-fosfatase
qPCR
Diagnosis
In situ Hybridization
Immunoperoxidase
Immunophosphatase
qPCR
Leishmaniose Cutânea
Hibridização In Situ
Técnicas Imunoenzimáticas
Diagnóstico
Ferreira, Luiz Claudio | Date Issued:
2022
Author
Affilliation
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Nacional de Infectologia Evandro Chagas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Abstract in Portuguese
A leishmaniose tegumentar americana (LTA) é uma antropozoonose causada por diferentes espécies do protozoário do gênero Leishmania que ocorrem no Novo Mundo e causam lesões na pele e/ou mucosas de vias aéreas superiores de humanos e outros mamíferos. O diagnóstico acurado é importante, uma vez que os fármacos utilizados no tratamento possuem elevada toxicidade. Um método alternativo e promissor para detecção sensível e específica de formas amastigotas de Leishmania em tecidos fixados com formol a 10% e emblocados em parafina (FFEP) é a técnica de hibridização in situ colorimétrica (CISH). O objetivo desse estudo é comparar a acurácia da técnica de CISH com dois métodos de imuno-histoquímica, histopatologia e qPCR para o diagnóstico de LTA causada por Leishmania braziliensis em amostras de pele com lesão FFEP. Foi desenhada uma sonda de oligonucleotídeos para CISH visando detecção específica de L. braziliensis. Amostras teciduais FFEP obtidas de lesões cutâneas de pacientes com LTA causada por L. braziliensis foram examinadas pelas técnicas de CISH, histopatologia (HP), imuno-fosfatase alcalina (IFA), imuno-peroxidase (IP) e qPCR. Essas amostras foram provenientes de 62 pacientes com diagnóstico de LTA confirmado pelo isolamento em cultura e caracterização isoenzimática de L. braziliensis (coletadas no período de 2000 a 2005) e de 45 pacientes com diagnóstico negativo para LTA na cultura parasitológica e positivo para Sporothrix sp. na cultura fúngica (coletadas no período de 2013 a 2015). As técnicas de IP, IFA e CISH também foram testadas em outras espécies de Leishmania diferentes de L. braziliensis e fungos patogênicos para verificação de reação ou hibridização cruzada Adicionalmente, foram incluídas 31 amostras teciduais FFEP obtidas de lesões cutâneas de pacientes com LTA causada por L. braziliensis (coletadas no período de 2020 a 2021) para avaliação da sensibilidade da CISH em amostras mais recentes. As sensibilidades da IFA, IP, HP, CISH (amostras de 2020 e 2021), CISH (amostras de 2002 a 2005), qPCR 18S e qPCR HSP70 foram 84%, 77%, 71%, 52%, 44%, 31% e 21%, respectivamente. A especificidade de todas as técnicas foi 100%, com exceção da IP com 93%. As acurácias da IFA, IP, HP, CISH, qPCR 18S e qPCR HSP70 foram 91%, 84%, 83%, 67%, 60% e 54%, respectivamente. Na CISH não houve reação cruzada com fungos causadores de lesões cutâneas e com outras espécies de Leishmania diferentes de L. braziliensis testadas, exceto L. guyanensis. Por sua vez, na IFA e IP houve reação cruzada com fungos patogênicos e todas as espécies de Leishmania diferentes de L. braziliensis testadas. A concordância inter observador foi substancial para CISH (amostras 2020 a 2021), moderada para CISH (amostras 2002 a 2005), HP e IFA e razoável para IP. Os resultados confirmam a CISH como um método específico para o diagnóstico da infecção por LTA causada por L. braziliensis e L. guyanensis em biópsias de lesão cutâneas FFEP, que pode ser implementada na rotina laboratorial para confirmação dos casos suspeitos de LTA por IP, IFA ou HP. Pela sua melhor acurácia, recomenda-se a utilização preferencial da IFA em comparação com a IP para o diagnóstico de LTA. Pela sua baixa sensibilidade, não é recomendada a utilização da qPCR 18S e HSP70 para diagnóstico da LTA em amostras FFEP com mais de 17 anos de armazenamento
Abstract
American tegumentary leishmaniasis (ATL) is an anthropozoonosis caused by different species of the protozoan of the genus Leishmania that occur in the New World and cause lesions in the skin and/or mucous membranes of the upper airways of humans and other mammals. Accurate diagnosis is important, since the drugs used in the treatment have high toxicity. A promising alternative method for sensitive and specific detection of Leishmania amastigotes in 10% formalin-fixed and paraffin-embedded (FFEP) tissues is the colorimetric in situ hybridization (CISH) technique. The aim of this study is to compare the accuracy of the CISH technique with two methods of immunohistochemistry, histopathology and qPCR for the diagnosis of ATL caused by Leishmania braziliensis in FFEP skin samples with lesion. An oligonucleotide probe for CISH was designed to specifically detect L. braziliensis. FFPE skin samples from ATL patients with cutaneous lesions caused by L. braziliensis were examined by CISH, histopathology (HP), immuno-alkaline phosphatase (IFA), immunoperoxidase (IP) and qPCR,. These skin samples were obtained from 62 patients with a diagnosis of ATL confirmed by the isolation in culture and isoenzymatic characterization of L. braziliensis (collected from 2000 to 2005) and from 45 patients with a diagnosis of skin lesions negative for ATL in the parasitological culture and positive for Sporothrix sp. in the fungal culture (collected from 2013 to 2015). The IP, IFA and CISH techniques were also tested on other Leishmania species other than L. braziliensis and pathogenic fungi to verify the reaction or cross-hybridization In addition, 31 FFEP tissue samples obtained from cutaneous lesions of patients with ATL caused by L. braziliensis (collected in the period from 2020 to 2021) were included to evaluate the sensitivity of CISH in more recent samples. The sensitivities of IFA, IP, HP, CISH (samples from 2020 and 2021), CISH (samples from 2002 to 2005), qPCR 18S and qPCR HSP70 were 84%, 77%, 71%, 52%, 44%, 31% e 21%, respectively. The specificity of all techniques was 100%, with the exception of IP with 93%. The accuracies of IFA, IP, HP, CISH, qPCR 18S and qPCR HSP70 were 91%, 84%, 83%, 67%, 60% and 54%, respectively. In the CISH there was no cross-reaction with fungi causing skin lesions and with tested Leishmania species other than L. braziliensis, except for L. guyanensis. In turn, in IFA and IP there was a cross-reaction with pathogenic fungi and all tested Leishmania species other than L. braziliensis. Inter-observer agreement was substantial for CISH (samples 2020 to 2021), moderate for CISH (samples 2002 to 2005), HP and IFA, and fair for IP. The results confirm CISH as a specific method for the diagnosis of ATL infection caused by L. braziliensis and L. guyanensis in FFEP skin lesion biopsies that can be implemented in the laboratory routine to confirm suspected cases of ATL by IP, IFA or HP. The preferential use of IFA compared to IP is recommended for the diagnosis of ATL, due to its better accuracy. The use of qPCR 18S and HSP70 is not recommended for the diagnosis of ATL in FFEP samples with more than 17 years of storage, due to its low sensitivity
Keywords in Portuguese
Leishmaniose CutâneaDiagnóstico
Hibridização in situ
Imuno-peroxidase
Imuno-fosfatase
qPCR
Keywords
Cutaneous LeishmaniasisDiagnosis
In situ Hybridization
Immunoperoxidase
Immunophosphatase
qPCR
DeCS
Reação em Cadeia da Polimerase em Tempo RealLeishmaniose Cutânea
Hibridização In Situ
Técnicas Imunoenzimáticas
Diagnóstico
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