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Sustainable Development Goals
03 Saúde e Bem-Estar09 Indústria, inovação e infraestrutura
17 Parcerias e meios de implementação
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- IOC - Artigos de Periódicos [12791]
Metadata
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POLYMYXIN RESISTANCE IN ENTEROBACTER CLOACAE COMPLEX IN BRAZIL: PHENOTYPIC AND MOLECULAR CHARACTERIZATION
Polymyxin₂
Two component system₃
Enterobacterales₄
Phosphoetanolamine transferase₅
Author
Costa, Bianca Santos da
Peixoto, Renata Stavracakis
Conceição Neto, Orlando Carlos da
Pontes, Leilane da Silva
Oliveira, Thamirys Rachel Tavares e
Teixeira, Camila Bastos Tavares
Santos, Ivson Cassiano de Oliveira
Silveira, Melise Chaves
Rodrigues, Daiana Cristina Silva
Pribul, Bruno Rocha
Souza, Cláudio Marcos Rocha de
Assef, Ana Paula D'Alincourt Carvalho
Peixoto, Renata Stavracakis
Conceição Neto, Orlando Carlos da
Pontes, Leilane da Silva
Oliveira, Thamirys Rachel Tavares e
Teixeira, Camila Bastos Tavares
Santos, Ivson Cassiano de Oliveira
Silveira, Melise Chaves
Rodrigues, Daiana Cristina Silva
Pribul, Bruno Rocha
Souza, Cláudio Marcos Rocha de
Assef, Ana Paula D'Alincourt Carvalho
Affilliation
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Bacteriologia Aplicada a Saúde Única e Resistência Antimicrobiana. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Bacteriologia Aplicada a Saúde Única e Resistência Antimicrobiana. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Bacteriologia Aplicada a Saúde Única e Resistência Antimicrobiana. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Bacteriologia Aplicada a Saúde Única e Resistência Antimicrobiana. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Bacteriologia Aplicada a Saúde Única e Resistência Antimicrobiana. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Bacteriologia Aplicada a Saúde Única e Resistência Antimicrobiana. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Bacteriologia Aplicada a Saúde Única e Resistência Antimicrobiana. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Bacteriologia Aplicada a Saúde Única e Resistência Antimicrobiana. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Bacteriologia Aplicada a Saúde Única e Resistência Antimicrobiana. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Bacteriologia Aplicada a Saúde Única e Resistência Antimicrobiana. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Vice-diretoria de Laboratórios de Referência, Ambulatórios e Coleções Biológicas. Coleção de Culturas de Bactérias de Origem Hospitalar. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Bacteriologia Aplicada a Saúde Única e Resistência Antimicrobiana. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Vice-diretoria de Laboratórios de Referência, Ambulatórios e Coleções Biológicas. Coleção de Culturas de Bactérias de Origem Hospitalar. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Bacteriologia Aplicada a Saúde Única e Resistência Antimicrobiana. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Bacteriologia Aplicada a Saúde Única e Resistência Antimicrobiana. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Bacteriologia Aplicada a Saúde Única e Resistência Antimicrobiana. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Bacteriologia Aplicada a Saúde Única e Resistência Antimicrobiana. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Bacteriologia Aplicada a Saúde Única e Resistência Antimicrobiana. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Bacteriologia Aplicada a Saúde Única e Resistência Antimicrobiana. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Bacteriologia Aplicada a Saúde Única e Resistência Antimicrobiana. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Bacteriologia Aplicada a Saúde Única e Resistência Antimicrobiana. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Bacteriologia Aplicada a Saúde Única e Resistência Antimicrobiana. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Bacteriologia Aplicada a Saúde Única e Resistência Antimicrobiana. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Vice-diretoria de Laboratórios de Referência, Ambulatórios e Coleções Biológicas. Coleção de Culturas de Bactérias de Origem Hospitalar. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Bacteriologia Aplicada a Saúde Única e Resistência Antimicrobiana. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Vice-diretoria de Laboratórios de Referência, Ambulatórios e Coleções Biológicas. Coleção de Culturas de Bactérias de Origem Hospitalar. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Bacteriologia Aplicada a Saúde Única e Resistência Antimicrobiana. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Abstract
Enterobacter cloacae complex isolates have been reported as an important nosocomial multidrug resistance pathogen. In the present study, we investigated antimicrobial susceptibility and the colistin-resistance rates, their genetic determinants and clonality among clinical E. cloacae complex isolates from different Brazilian states. For this, an initial screening was carried out on 94 clinical isolates of E. clocacae complex received between 2016 and 2018 by LAPIH—FIOCRUZ, using EMB plates containing 4 μg/mL of colistin, followed MIC determination, resulting in the selection of 26 colistin-resistant isolates from the complex. The presence of carbapenemases encoding genes (blaKPC, blaNDM and blaOXA-48), plasmidial genes for resistance to polymyxins (mcr1-9) and mutations in chromosomal genes (pmrA, pmrB, phoP and phoQ) described as associated with resistance to polymyxin were screened by PCR and DNA sequencing. Finally, the hsp60 gene was sequenced to identify species of the E. cloacae complex and genetic diversity was evaluated by PFGE and MLST. The results have shown that among 94 E. cloacae complex isolates, 19 (20.2%) were colistin-resistant. The resistant strains exhibited MIC ranging from 4 to 128 µg / mL and E. hormaechei subsp. steigerwaltii was the prevalent species in the complex (31,6%), followed by E. cloacae subsp. cloacae (26,3%). The antimicrobials with the highest susceptibility rate were gentamicin (21%) and tigecycline (26%). Carbapenemases encoding genes (blaKPC n = 5, blaNDM n = 1) were detected in 6 isolates and mcr-9 in one. Among the modifications found in PmrA, PmrB, PhoP e PhoQ (two-component regulatory system), only the S175I substitution in PmrB found in E. cloacae subsp cloacae isolates were considered deleterious (according to the prediction of PROVEAN). By PFGE, 13 profiles were found among E. cloacae complex isolates, with EcD the most frequent. Furthermore, by MLST 10 ST’s, and 1 new ST, were identified in E. cloacae. In conclusion, no prevalence of clones or association among carbapenemase production and polymyxin resistance was found between the E. cloacae. Thereby, the results suggest that the increased polymyxin-resistance is related to the selective pressure exerted by the indiscriminate use in hospitals. Lastly, this study highlights the urgent need to elucidate the mechanism involved in the resistance to polymyxin in the E. cloacae complex and the development of measures to control and prevent infections caused by these multiresistant bacteria.
Keywords
Antibiotic resistance₁Polymyxin₂
Two component system₃
Enterobacterales₄
Phosphoetanolamine transferase₅
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