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Sustainable Development Goals
03 Saúde e Bem-Estar04 Educação de qualidade
09 Indústria, inovação e infraestrutura
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- IOC - Artigos de Periódicos [12984]
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ALTERED GALECTIN-3 DISTRIBUTION AND MIGRATORY FUNCTION IN THE PRE-DIABETIC NON-OBESE DIABETIC MOUSE THYMUS
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Affilliation
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Pesquisa sobre o Timo. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Neuroimunomodulação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal Fluminense. Instituto de Biologia. Departamento de Neurobiologia. Laboratório de Neuroquímica. Niterói, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Pesquisa sobre o Timo. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Neuroimunomodulação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal Fluminense. Instituto de Biologia. Departamento de Neurobiologia. Laboratório de Neuroquímica. Niterói, RJ, Brasil / Universidade de São Paulo. Faculdade de Medicina. Comprehensive Center for Precision Oncology. São Paulo, SP, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Pesquisa sobre o Timo. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Neuroimunomodulação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Rede de Pesquisa em Neuroinflamação do Rio de Janeiro. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Rede INOVA-IOC em Neuroimunomodulação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal Fluminense. Instituto de Biologia. Departamento de Imunobiologia. Laboratório de Patologia Experimental. Niterói, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Pesquisa sobre o Timo. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Neuroimunomodulação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Rede de Pesquisa em Neuroinflamação do Rio de Janeiro. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Rede INOVA-IOC em Neuroimunomodulação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Pesquisa sobre o Timo. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Neuroimunomodulação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Rede de Pesquisa em Neuroinflamação do Rio de Janeiro. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Rede INOVA-IOC em Neuroimunomodulação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal Fluminense. Instituto de Biologia. Departamento de Neurobiologia. Laboratório de Neuroquímica. Niterói, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Pesquisa sobre o Timo. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Neuroimunomodulação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal Fluminense. Instituto de Biologia. Departamento de Neurobiologia. Laboratório de Neuroquímica. Niterói, RJ, Brasil / Universidade de São Paulo. Faculdade de Medicina. Comprehensive Center for Precision Oncology. São Paulo, SP, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Pesquisa sobre o Timo. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Neuroimunomodulação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Rede de Pesquisa em Neuroinflamação do Rio de Janeiro. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Rede INOVA-IOC em Neuroimunomodulação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal Fluminense. Instituto de Biologia. Departamento de Imunobiologia. Laboratório de Patologia Experimental. Niterói, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Pesquisa sobre o Timo. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Neuroimunomodulação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Rede de Pesquisa em Neuroinflamação do Rio de Janeiro. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Rede INOVA-IOC em Neuroimunomodulação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Pesquisa sobre o Timo. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Neuroimunomodulação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Rede de Pesquisa em Neuroinflamação do Rio de Janeiro. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Rede INOVA-IOC em Neuroimunomodulação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Abstract
Galectin-3 is an endogenous lectin which binds mainly to β-galactosides on the cell surface and extracellular matrix (ECM) glycoproteins. In the thymus, this lectin is constitutively expressed, being involved in thymocyte adhesion, migration, and death. Galectin-3 has been related to type 1 diabetes, an autoimmune disease characterized by pancreatic β-cell destruction mediated by autoreactive T lymphocytes. Non-obese diabetic (NOD) mice represent a suitable model to study type 1 diabetes, as they develop the disease like humans. We previously described important thymic alterations in these animals such as the development of giant perivascular spaces (PVS), characterized by the retention of T and B cells, intermingled with an ECM network, and associated with a defect in the expression of the fibronectin receptor VLA-5 and reduced sphingosine-1-phosphate receptor expression on developing thymocytes. In order to investigate galectin-3 expression in thymic microenvironmental cells and verify its interaction with cells and ECM molecules in PVS, we performed immunofluorescence following colocalization analysis in the thymic parenchyma of pre-diabetic NOD mice by confocal microscopy. In addition, thymocyte migration assays were performed to evaluate the effect of galectin-3 on NOD thymocyte migration. Herein, we showed a significant enhancement of colocalization with cortical and medullary thymic epithelial cells in NOD mice, as compared to controls. In the giant PVS of these animals, we observed a heterogeneous distribution of galectin-3, predominantly found in clusters of B lymphocytes and dendritic cells. Functionally, NOD thymocyte migratory response towards galectin-3 was impaired and a similar decrease was seen in transendothelial thymocyte migration. Taken together, our data provide the histological and functional background for a potential defective thymocyte migration involving galectin-3, thus placing this molecule as a further player in the intrathymic disturbances observed in pre-diabetic NOD mice.
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