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https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/67602
Type
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2027
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PRECLINICAL EVALUATION OF SINGLE DOMAIN ANTIBODY EFFICACY IN MITIGATING LOCAL TISSUE DAMAGE INDUCED BY BOTHROPS SNAKE ENVENOMATION
Author
Prado, Nidiane Dantas Reis
Silva, Nairo Brilhante da
Paloschi, Mauro Valentino
Roberto, Sibele Andrade
Barreto, Breno Cardim
Vasconcelos, Juliana Fraga
Soares, Milena Botelho Pereira
Carvalho, Rainery Monteiro de
Melo, Thifany Foschiera de
Santos, Emanuelle de Souza
Santos, Eliza Lima dos
Jesus, Bruna Eugenia Souza de
Araújo, Erika Crhistina Santos de
Soares, Andreimar Martins
Stabeli, Rodrigo Guerino
Fernandes, Carla Freire Celedonio
Zuliani, Juliana Pavan
Pereira, Soraya dos Santos
Silva, Nairo Brilhante da
Paloschi, Mauro Valentino
Roberto, Sibele Andrade
Barreto, Breno Cardim
Vasconcelos, Juliana Fraga
Soares, Milena Botelho Pereira
Carvalho, Rainery Monteiro de
Melo, Thifany Foschiera de
Santos, Emanuelle de Souza
Santos, Eliza Lima dos
Jesus, Bruna Eugenia Souza de
Araújo, Erika Crhistina Santos de
Soares, Andreimar Martins
Stabeli, Rodrigo Guerino
Fernandes, Carla Freire Celedonio
Zuliani, Juliana Pavan
Pereira, Soraya dos Santos
Affilliation
Fundação Oswaldo Cruz. Laboratório de Engenharia de Anticorpos. Porto Velho, RO, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Laboratório de Engenharia de Anticorpos. Porto Velho, RO, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Programa de Pós-graduação em Biologia Celular e Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunologia Celular Aplicada à Saúde. Porto Velho, RO, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Laboratório de Engenharia de Anticorpos. Porto Velho, RO, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Programa de Pós-graduação em Biologia Experimental. Porto Velho, RO, Brasil / Universidade Federal de Rondônia. Porto Velho, RO, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Laboratório de Engenharia Tecidual e Imunofarmacologia. Salvador, BA, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Laboratório de Engenharia Tecidual e Imunofarmacologia. Salvador, BA, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Laboratório de Engenharia Tecidual e Imunofarmacologia. Salvador, BA, Brasil / Instituto de Tecnologia da Saúde. SENAI CIMATEC. Salvador, BA, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Laboratório de Engenharia de Anticorpos. Porto Velho, RO, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Programa de Pós-graduação em Biologia Experimental. Porto Velho, RO, Brasil / Universidade Federal de Rondônia. Porto Velho, RO, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Laboratório de Engenharia de Anticorpos. Porto Velho, RO, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Laboratório de Engenharia de Anticorpos. Porto Velho, RO, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Laboratório de Engenharia de Anticorpos. Porto Velho, RO, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Laboratório de Biotecnologia e Educação Aplicadas à Saúde. Porto Velho, RO, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia de Epidemiologia da Amazônia Ocidental. Manaus, AM, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Laboratório de Biotecnologia e Educação Aplicadas à Saúde. Porto Velho, RO, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia de Epidemiologia da Amazônia Ocidental. Manaus, AM, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Programa de Pós-graduação em Biologia Experimental. Porto Velho, RO, Brasil / Universidade Federal de Rondônia. Porto Velho, RO, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Plataforma Bi-institucional de Medicina Translacional. São Paulo, SP, Brasil / Universidade de São Paulo. Ribeirão Preto, SP, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Laboratório Multiusuário de Pesquisa e Desenvolvimento. Eusebio, CE, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Programa de Pós-graduação em Biologia Celular e Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunologia Celular Aplicada à Saúde. Porto Velho, RO, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Programa de Pós-graduação em Biologia Experimental. Porto Velho, RO, Brasil / Universidade Federal de Rondônia. Porto Velho, RO, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Programa de Pós-graduação em Biologia Celular e Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Laboratório de Engenharia de Anticorpos. Porto Velho, RO, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Programa de Pós-graduação em Biologia Experimental. Porto Velho, RO, Brasil / Universidade Federal de Rondônia. Porto Velho, RO, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Programa de Pós-graduação em Biologia Celular e Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Laboratório de Engenharia de Anticorpos. Porto Velho, RO, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Programa de Pós-graduação em Biologia Celular e Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunologia Celular Aplicada à Saúde. Porto Velho, RO, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Laboratório de Engenharia de Anticorpos. Porto Velho, RO, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Programa de Pós-graduação em Biologia Experimental. Porto Velho, RO, Brasil / Universidade Federal de Rondônia. Porto Velho, RO, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Laboratório de Engenharia Tecidual e Imunofarmacologia. Salvador, BA, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Laboratório de Engenharia Tecidual e Imunofarmacologia. Salvador, BA, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Laboratório de Engenharia Tecidual e Imunofarmacologia. Salvador, BA, Brasil / Instituto de Tecnologia da Saúde. SENAI CIMATEC. Salvador, BA, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Laboratório de Engenharia de Anticorpos. Porto Velho, RO, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Programa de Pós-graduação em Biologia Experimental. Porto Velho, RO, Brasil / Universidade Federal de Rondônia. Porto Velho, RO, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Laboratório de Engenharia de Anticorpos. Porto Velho, RO, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Laboratório de Engenharia de Anticorpos. Porto Velho, RO, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Laboratório de Engenharia de Anticorpos. Porto Velho, RO, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Laboratório de Biotecnologia e Educação Aplicadas à Saúde. Porto Velho, RO, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia de Epidemiologia da Amazônia Ocidental. Manaus, AM, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Laboratório de Biotecnologia e Educação Aplicadas à Saúde. Porto Velho, RO, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia de Epidemiologia da Amazônia Ocidental. Manaus, AM, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Programa de Pós-graduação em Biologia Experimental. Porto Velho, RO, Brasil / Universidade Federal de Rondônia. Porto Velho, RO, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Plataforma Bi-institucional de Medicina Translacional. São Paulo, SP, Brasil / Universidade de São Paulo. Ribeirão Preto, SP, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Laboratório Multiusuário de Pesquisa e Desenvolvimento. Eusebio, CE, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Programa de Pós-graduação em Biologia Celular e Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunologia Celular Aplicada à Saúde. Porto Velho, RO, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Programa de Pós-graduação em Biologia Experimental. Porto Velho, RO, Brasil / Universidade Federal de Rondônia. Porto Velho, RO, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Programa de Pós-graduação em Biologia Celular e Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Laboratório de Engenharia de Anticorpos. Porto Velho, RO, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Programa de Pós-graduação em Biologia Experimental. Porto Velho, RO, Brasil / Universidade Federal de Rondônia. Porto Velho, RO, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Programa de Pós-graduação em Biologia Celular e Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Abstract
Camelid single-domain antibodies (VHH) represent a promising class of immunobiologicals for therapeutic applications due to their remarkable stability, specificity, and therapeutic potential. To enhance the effectiveness of antivenoms for snakebites, various methods have been explored to address limitations associated with serum therapy, particularly focusing on mitigating local damage and ensuring sustainable production. Our study aimed to characterize the pharmacological profile and neutralization capacity of anti-Phospholipase A2 (PLA2) monomeric VHH (Genbank accessions: KC329718). Using a post-envenoming mouse model, we used intravital microscopy to assess leukocyte influx, measured CK and LDH levels, and conducted a histopathology analysis to evaluate VHH KC329718′s ability to neutralize myotoxic activity. Our findings demonstrated that VHH KC329718 exhibited heterogeneous distribution in muscle tissue. Treatment with VHH KC329718 reduced leukocyte influx caused by BthTX-I (a Lys-49 PLA2) by 28 %, as observed through intravital microscopy. When administered at a 1:10 ratio [venom or toxin:VHH (w/w)], VHH KC329718 significantly decreased myotoxicity, resulting in a 35–40 % reduction in CK levels from BthTX-I and BthTX-II (an Asp-49 PLA2) and a 60 % decrease in CK levels from B. jararacussu venom. LDH levels also showed reductions of 60%, 80%, and 60% induced by BthTX-I, BthTX-II, and B. jararacussu venom, respectively. Histological analysis confirmed the neutralization potential, displaying a significant reduction in tissue damage and inflammatory cell count in mice treated with VHH KC329718 post B. jararacussu venom inoculation. This study underscores the potential of monomeric anti-PLA2 VHH in mitigating myotoxic effects, suggesting a promising avenue for the development of new generation antivenoms to address current therapeutic limitations.
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