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https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/7064
CARACTERIZAÇÃO MOLECULAR E BIOQUÍMICA DE CARBOIDRASES DIGESTIVAS EM LARVAS DE LUTZOMYIA LONGIPALPIS
Moraes, Caroline da Silva | Date Issued:
2012
Author
Advisor
Comittee Member
Affilliation
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Rio de Janeiro, RJ, Brasil
Abstract in Portuguese
Lutzomyia longipalpis é o principal vetor da leishmaniose visceral no Novo Mundo. Em flebotomíneos as fases
adultas e imaturas exploram diferentes fontes alimentares. Os adultos se alimentam de seiva vegetal (no caso de
machos e fêmeas) ou sangue (no caso das fêmeas) e as larvas crescem em material orgânico em decomposição,
principalmente de origem vegetal ou fezes de animais. Com relação à digestão das larvas, poucos trabalhos vêm
sendo desenvolvidos, entretanto, atualmente é sugerido na literatura que as larvas se alimentam de
microorganismos contidos em sua dieta. No presente trabalho foram caracterizadas sob o ponto de vista
bioquímico as carboidrases digestivas presentes em larvas de L. longipalpis. Ensaios bioquímicos mostraram
atividade enzimática no homogenato do tubo digestivo de -1,3-glucanase, quitinase, lisozima, amilase, e -
glicosidase, e -manosidase, N-acetilglicosaminidase e sialidase. Beta-1,3-glucanase e amilase foram as
hidrolases com as maiores atividades, estando localizadas majoritariamente no espaço endoperitrófico. As
enzimas lisozima/quitinase, - e -glicosidases, N-acetil-glicosaminidase mostraram maiores atividades
enzimáticas no epitélio intestinal do tubo digestivo de larvas de L. longipalpis, enquanto sialidase e -
manosidade apresentaram atividades equiparadas entre conteúdo luminal e epitélio intestinal no tubo digestivo
das fases larvais. Cromatografia de filtração em gel e propriedades cinéticas mostraram que as isoformas solúveis
de todas as enzimas encontradas nos tubos digestivos das formas larvais de L. longipalpis são diferentes das
isoformas encontradas na dieta. O pirosequenciamento utilizando 454 Genome Sequencer FLX (Roche Applied
Science) originou cerca de 223.093 reads e a montagem desses gerou 2883 transcritos, os quais 97% foram
anotados. A anotação dos transcritos encontrados no transcriptoma mostou a preseça de enzimas cruciais para a
digestão de proteínas, carboidratos e lipídios, bem como enzimas importantes para a detoxificação de
xenobióticos, estresse oxidativo, resposta imune além da presença de peritrofinas, mucinas e hemocianinas. A
análise pelo GO classificou 2195 isotigs em três categorias: função molecular, processos biológicos e
componentes celulares, onde a maioria dos transcritos foi caracterizado como atividade catalítica (função
molecular), processos metabólicos (processo biológico) e célula (componentes celulares). Tendo em vista a
ingestão de microorganismos na dieta alimentar de larvas de flebotomíneo, o presente trabalho pesquisou na
biblioteca de EST de L. longipalpis membros das enzimas glicosídeo hidrolases pertencentes às famílias 16 (-
1,3-glucanases), 18 (quitinases) e 22 (lisozimas), onde foi encontrado um total de 3, 5 e 1 sequências,
respectivamente. Os transcritos NSFM-24g06 e NSFM-140g04 foram expressos no tubo digestivo das larvas
quando comparados à expressão na carcaça. Outros transcritos foram mais expressos na carcaça e/ou cabeça ou
não foram expressos em nenhum tecido das formas larvais. Diante dos dados obtidos nesse trabalho é sugerido
que o perfil de carboidrases encontradas no tubo digestivo de larvas de L. longipalpis é coerente com o hábitat de
vida detritívoro e provavelmente participa da digestão de bactérias e fungos. Além disso, propomos que os
transcritos NSFM-24g06 and NSFM-140g04 correspondem a atividade de -1,3-glucanase e quitinase digestivas
os quais podem representar importantes alvos para supressão ou inibição da digestão desse vetor.
Abstract
Lutzomyia longipalpis is the main vector of visceral leishmaniasis in the New World. Sandflies in the adult or
immature stages exploit different food sources. The adults feed on plant sap (males and females) or blood
(females) and the larvae grow in decaying organic matter, mainly plant tissues or animal feces. Few studies have
been developed concerning the digestion of larvae. However, it is currently believed that the larvae nourish on
microorganisms which are present in their diet. In the present study we investigated the digestive carbohydrases
in L. longipalpis larvae. Biochemical assays showed the presence in the gut of β-1,3-glucanase, chitinase,
lysozyme, amylase, - and -glicosidases, - and -manosidases, N-acetilglicosaminidase and sialidase. Beta-
1,3-glucanase and amylase were the most active carbohydrases, are soluble enzymes and are located mostly
within the endoperitrophic contents. Lysozyme, chitinase, - and -glicosidase and N-acetyl-glucosaminidase are
associated with the gut intestinal epithelium, while - and -mannosidase and sialidase are equally distributed
among intestinal epithelium and luminal contents. Based on kinetic and chromatographic behaviors, the soluble
isoforms of all gut carbohydrases studied are different from the activities present in the larval food. Sequencing
the transcriptome of guts from L. longipalpis larvae (Genome Sequencer FLX, Roche Applied Science) resulted
in 223,093 reads, corresponding to 2883 isotigs, of which 83% were annotated. We described transcripts
corresponding to enzymes involved in the digestion of proteins, carbohydrates and lipids, as well as proteins
related to xenobiotic detoxification, oxidative stress, immune response, peritrophins, mucins and hemocianins.
2195 isotigs were analysed using Gene Onthology and rated in three categories: molecular function, biological
process and cellular component, and most of the transcripts were characterized as catalytic activities, metabolic
process and cellular component. Regarding the microorganism intake in phlebotomine larvae, we searched the
EST library of L. longipalpis for members of glycoside hydrolases families 16 ( -1,3-glucanases), 18
(chitinases) and 22 (lysozymes) and found respectively 3, 5 and 1 sequences. Transcripts NSFM-24g06 and
140g04-NSFM were more expressed in the gut of the larvae when compared to the expression in the carcass or in
other developmental stages. Other transcripts from GH16, GH18 or GH22 were more expressed in the carcass,
head or were not expressed in larvae. Our data suggests that the carbohydrase profile of the gut of L. longipalpis
larvae is consistent with the detritivore habit. These enzymes probably participate in the digestion of bacterial
and fungal cells. Furthermore, we propose that the transcripts NSFM-24g06 and NSFM-140g04 correspond to
the intestinal activities of -1,3-glucanase and chitinase in these insects. Both activities may represent important
targets for suppression or inhibition of digestion aiming the control of this vector.
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