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https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/9461
LBSAPSAL-VACCINATED DOGS EXHIBIT INCREASED CIRCULATING T-LYMPHOCYTE SUBSETS (CD4⁺ AND CD8⁺) AS WELL AS A REDUCTION OF PARASITISM AFTER CHALLENGE WITH LEISHMANIA INFANTUM PLUS SALIVARY GLAND OF LUTZOMYIA LONGIPALPIS
Canine visceral leishmaniasis
Immunogenicity
Experimental challenge
Leishmania infantum
Saliva of Lutzomyia longipalpis
10.1186/1756-3305-7-61
Autor(es)
Soares, Rodrigo Dian de Oliveira Aguiar
Roatt, Bruno Mendes
Ker, Henrique Gama
Moreira, Nádia das Dores
Mathias, Fernando Augusto Siqueira
Cardoso, Jamille Mirelle de Oliveira
Gontijo, Nelder Figueiredo
Romero, Oscar Bruna
Carvalho, Andréa Teixeira
Martins Filho, Olindo Assis
Oliveira, Rodrigo Corrêa de
Giunchetti, Rodolfo Cordeiro
Reis, Alexandre Barbosa
Roatt, Bruno Mendes
Ker, Henrique Gama
Moreira, Nádia das Dores
Mathias, Fernando Augusto Siqueira
Cardoso, Jamille Mirelle de Oliveira
Gontijo, Nelder Figueiredo
Romero, Oscar Bruna
Carvalho, Andréa Teixeira
Martins Filho, Olindo Assis
Oliveira, Rodrigo Corrêa de
Giunchetti, Rodolfo Cordeiro
Reis, Alexandre Barbosa
Afiliação
Universidade Federal de Ouro Preto. Instituto de Ciências Exatas e Biológicas. Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas. Laboratório de Imunopatologia. Ouro Preto, MG, Brasil.
Universidade Federal de Ouro Preto. Instituto de Ciências Exatas e Biológicas. Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas. Laboratório de Imunopatologia. Ouro Preto, MG, Brasil.
Universidade Federal de Ouro Preto. Instituto de Ciências Exatas e Biológicas. Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas. Laboratório de Imunopatologia. Ouro Preto, MG, Brasil.
Universidade Federal de Ouro Preto. Instituto de Ciências Exatas e Biológicas. Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas. Laboratório de Imunopatologia. Ouro Preto, MG, Brasil.
Universidade Federal de Ouro Preto. Instituto de Ciências Exatas e Biológicas. Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas. Laboratório de Imunopatologia. Ouro Preto, MG, Brasil.
Universidade Federal de Ouro Preto. Instituto de Ciências Exatas e Biológicas. Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas. Laboratório de Imunopatologia. Ouro Preto, MG, Brasil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Departamento de Parasitologia. Laboratório de Fisiologia de Insetos Hematófagos. Belo Horizonte, MG, Brasil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Departamento de Microbiologia. Belo Horizonte, MG, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisa René Rachou. Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração. Belo Horizonte, MG, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisa René Rachou. Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração. Belo Horizonte, MG, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas René Rachou. Laboratório de Imunologia Celular e Molecular. Belo Horizonte, MG, Brasil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Departamento de Morfologia. Laboratório de Biologia das Interações Celulares. Belo Horizonte, MG, Brasil.
Universidade Federal de Ouro Preto. Instituto de Ciências Exatas e Biológicas. Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas. Laboratório de Imunopatologia. Ouro Preto, MG, Brasil/Universidade Federal de Ouro Preto. Escola de Farmácia. Departamento de Análises Clínicas. Ouro Preto, MG, Brasil/Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Doenças Tropicais. Salvador, BA, Brasil.
Universidade Federal de Ouro Preto. Instituto de Ciências Exatas e Biológicas. Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas. Laboratório de Imunopatologia. Ouro Preto, MG, Brasil.
Universidade Federal de Ouro Preto. Instituto de Ciências Exatas e Biológicas. Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas. Laboratório de Imunopatologia. Ouro Preto, MG, Brasil.
Universidade Federal de Ouro Preto. Instituto de Ciências Exatas e Biológicas. Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas. Laboratório de Imunopatologia. Ouro Preto, MG, Brasil.
Universidade Federal de Ouro Preto. Instituto de Ciências Exatas e Biológicas. Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas. Laboratório de Imunopatologia. Ouro Preto, MG, Brasil.
Universidade Federal de Ouro Preto. Instituto de Ciências Exatas e Biológicas. Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas. Laboratório de Imunopatologia. Ouro Preto, MG, Brasil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Departamento de Parasitologia. Laboratório de Fisiologia de Insetos Hematófagos. Belo Horizonte, MG, Brasil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Departamento de Microbiologia. Belo Horizonte, MG, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisa René Rachou. Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração. Belo Horizonte, MG, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisa René Rachou. Laboratório de Biomarcadores de Diagnóstico e Monitoração. Belo Horizonte, MG, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas René Rachou. Laboratório de Imunologia Celular e Molecular. Belo Horizonte, MG, Brasil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Departamento de Morfologia. Laboratório de Biologia das Interações Celulares. Belo Horizonte, MG, Brasil.
Universidade Federal de Ouro Preto. Instituto de Ciências Exatas e Biológicas. Núcleo de Pesquisas em Ciências Biológicas. Laboratório de Imunopatologia. Ouro Preto, MG, Brasil/Universidade Federal de Ouro Preto. Escola de Farmácia. Departamento de Análises Clínicas. Ouro Preto, MG, Brasil/Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Doenças Tropicais. Salvador, BA, Brasil.
Resumo em Inglês
BACKGROUND: The development of a protective vaccine against canine visceral leishmaniasis (CVL) is an alternative approach for interrupting the domestic cycle of Leishmania infantum. Given the importance of sand fly salivary proteins as potent immunogens obligatorily co-deposited during transmission of Leishmania parasites, their inclusion in an anti-Leishmania vaccine has been investigated in the last few decades. In this context, we previously immunized dogs with a vaccine composed of L. braziliensis antigens plus saponin as the adjuvant and sand fly salivary gland extract (LBSapSal vaccine). This vaccine elicited an increase in both anti-saliva and anti-Leishmania IgG isotypes, higher counts of specific circulating CD8⁺ T cells, and high NO production.
METHODS: We investigated the immunogenicity and protective effect of LBSapSal vaccination after intradermal challenge with 1 × 10⁷ late-log-phase L. infantum promastigotes in the presence of sand fly saliva of Lutzomyia longipalpis. The dogs were followed for up to 885 days after challenge.
RESULTS: The LBSapSal vaccine presents extensive antigenic diversity with persistent humoral and cellular immune responses, indicating resistance against CVL is triggered by high levels of total IgG and its subtypes (IgG1 and IgG2); expansion of circulating CD5⁺, CD4⁺, and CD8⁺ T lymphocytes and is Leishmania-specific; and reduction of splenic parasite load.
CONCLUSIONS: These results encourage further study of vaccine strategies addressing Leishmania antigens in combination with proteins present in the saliva of the vector.
Palavras-chave em inglês
LBSapSal vaccineCanine visceral leishmaniasis
Immunogenicity
Experimental challenge
Leishmania infantum
Saliva of Lutzomyia longipalpis
Editor
BioMed Central
Referência
SOARES, Rodrigo Dian de Oliveira Aguiar et al. LBSapSal-vaccinated dogs exhibit increased circulating T-lymphocyte subsets (CD4⁺ and CD8⁺) as well as a reduction of parasitism after challenge with Leishmania infantum plus salivary gland of Lutzomyia longipalpis. Parasit Vectors, v. 7, p. 61, 2014.ISSN
1756-330510.1186/1756-3305-7-61
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