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AutorBensalah, Mona
AutorKlein, Pierre
AutorRiederer, Ingo
AutorChaouch, Soraya
AutorMuraine, Laura
AutorSavino, Wilson
AutorButler-Browne, Gillian Sandra
AutorTrollet, Capucine
AutorMouly, Vincent
AutorBigot, Anne
Data de acesso2019-07-04T14:58:22Z
Data de disponibilização2019-07-04T14:58:22Z
Data do publicação2019
CitaçãoBENSALAH, Mona et al. Combined methods to evaluate human cells in muscle xenografts. Plos One, v. 14, n. 5, p. 1-12, May 2019.pt_BR
ISSN1932-6203pt_BR
URIhttps://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/33839
Idiomaengpt_BR
EditorPublic Library of Sciencept_BR
Direito Autoralopen access
Palavras-chaveMétodos combinadospt_BR
Palavras-chaveXenógrafos de músculospt_BR
Palavras-chaveCélulas humanaspt_BR
Palavras-chaveXenotransplantept_BR
TítuloCombined methods to evaluate human cells in muscle xenograftspt_BR
Tipo do documentoArticle
DOI10.1371/journal.pone.0211522
Resumo em InglêsXenotransplantation of human cells into immunodeficient mouse models is a very powerful tool and an essential step for the pre-clinical evaluation of therapeutic cell- and gene- based strategies. Here we describe an optimized protocol combining immunofluorescence and real-time quantitative PCR to both quantify and visualize the fate and localization of human myogenic cells after injection in regenerating muscles of immunodeficient mice. Whereas real-time quantitative PCR-based method provides an accurate quantification of human cells, it does not document their specific localization. The addition of an immunofluorescence approach using human-specific antibodies recognizing engrafted human cells gives information on the localization of the human cells within the host muscle fibres, in the stem cell niche or in the interstitial space. These two combined approaches offer an accurate evaluation of human engraftment including cell number and localization and should provide a gold standard to compare results obtained either using different types of human stem cells or comparing healthy and pathological muscle stem cells between different research laboratories worldwide.pt_BR
AfiliaçãoSorbonne Université. Myology Research Center. UM76 and INSERM U974. Institut de Myologie. Paris, France.pt_BR
AfiliaçãoSorbonne Université. Myology Research Center. UM76 and INSERM U974. Institut de Myologie. Paris, France.pt_BR
AfiliaçãoFundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Pesquisa sobre o Timo. Rio de Janeiro, RJ. Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Instituto Nacional em Ciência e Tecnologia em Neuroimunomodulação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.pt_BR
AfiliaçãoSorbonne Université. Myology Research Center. UM76 and INSERM U974. Institut de Myologie. Paris, France.pt_BR
AfiliaçãoSorbonne Université. Myology Research Center. UM76 and INSERM U974. Institut de Myologie. Paris, France.pt_BR
AfiliaçãoFundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Pesquisa sobre o Timo. Rio de Janeiro, RJ. Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Instituto Nacional em Ciência e Tecnologia em Neuroimunomodulação. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.pt_BR
AfiliaçãoSorbonne Université. Myology Research Center. UM76 and INSERM U974. Institut de Myologie. Paris, France.pt_BR
AfiliaçãoSorbonne Université. Myology Research Center. UM76 and INSERM U974. Institut de Myologie. Paris, France.pt_BR
AfiliaçãoSorbonne Université. Myology Research Center. UM76 and INSERM U974. Institut de Myologie. Paris, France.pt_BR
AfiliaçãoSorbonne Université. Myology Research Center. UM76 and INSERM U974. Institut de Myologie. Paris, France.pt_BR
Palavras-chave em inglêsCombined methodspt_BR
Palavras-chave em inglêsMuscle xenograftspt_BR
Palavras-chave em inglêsHuman cellspt_BR
Palavras-chave em inglêsXenotransplantationpt_BR


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Nome:
WilsonSavino_etal_IOC_2019.pdf
Tamanho:
1.564Mb
Formato:
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