Orientador | Farias, Leonardo Paiva | |
Autor | Khouri, Mariana Ivo | |
Data de acesso | 2021-12-04T00:21:07Z | |
Data de disponibilização | 2021-12-04T00:21:07Z | |
Data do publicação | 2020 | |
Citação | KHOURI, Mariana Ivo. Avaliação do papel protetor de histonas nucleossomais de Leishmania como estratégia vacinal contra a leishmaniose cutânea experimental causada por L. braziliensis. 2020. 96 f. Dissertação (Mestrado em Biotecnologia em Saúde e Medicina Investigativa)-Instituto Gonçalo Moniz, Fundação Oswaldo Cruz, Salvador, 2020. | pt_BR |
URI | https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/50168 | |
Resumo | INTODUÇÃO: A vacinação é uma das intervenções médicas mais importantes já implementadas. Apesar de todos os avanços, ainda existem muitas doenças sem vacinas disponíveis. Entre estas doenças, pode-se destacar a leishmaniose. Esta é uma doença parasitária que apresenta grande impacto na saúde pública. Existe um consenso que a indução de uma forte resposta imune celular seja protetora para leishmaniose. Dentre as novas plataformas para apresentar antígenos e induzir esta resposta podemos destacar novas formas de delivery e os adjuvantes. Neste trabalho, foram abordadas três estratégias visando gerar conhecimentos sobre o desenvolvimento de uma vacina contra este parasito. Primeiramente, foi avaliado o efeito adjuvante de nanopartículas lipídicas sólidas (NLS) catiônicas e aniônicas sobre histonas nucleossomais de L. infantum em células dendríticas (DC) murinas. Posteriormente, foi avaliado o efeito protetor destas histonas nucleossomais como antígenos vacinais em associação com CpG ODN, bem como de parasitos nocautes, ambos utilizando o modelo murino cutâneo de L. braziliensis. OBJETIVO: Avaliar o papel protetor de histonas nucleossomais (H2A, H2B, H3 e H4) de Leishmania como estratégia vacinal contra a leishmaniose cutânea experimental causada por L. braziliensis. MATERIAIS E MÉTODOS: As NLS catiônicas e aniônicas foram preparadas pelo método de dupla emulsão, utilizando Precirol ATO 5 como um lipídio, e quitosana a fase aquosa externa para obter NLS catiônicas. As partículas foram analisadas por tamanho, índice de polidispersão (PdI) e potencial zeta por espalhamento dinâmico de luz. Em seguida, a captação de NLS por DC e ativação delas foi avaliada por microscopia confocal e citometria de fluxo, respectivamente. Para os ensaios de imunização e desafio foi utilizado o modelo de infecção de orelha em BALB/C. Foram realizadas três imunizações com histonas nucleossomais acompanhadas de CpG, ou uma imunização com L. infantum nocaute para o gene LPG2 (Li \0394lpg2). Após o desafio com L. braziliensis o curso da doença foi avaliado medindo o tamanho da lesão, e decorridas 10 semanas do desafio, foi avaliada a carga parasitária, a resposta imune celular e humoral. RESULTADOS: Foi possível padronizar formulações de nanopartículas negativas e positivas. Estas apresentaram tamanhos médios de 260 e 340 nm, respectivamente, cargas de -31 e +56 mV e índices de polidispersão de 0,2 e 0,4. Em seguida, a avaliação da captação por DC demonstrou uma baixa taxa de internalização. Além disto, não foi possível notar diferenças nos marcadores de ativação celular após exposição das DC às NLS. Ensaios de imunização e desafio revelaram uma redução significativa do tamanho de lesão apenas no grupo imunizado com o parasito nocaute Li \0394lpg2. Também houve uma redução da carga parasitária no linfonodo em todos os grupos quando comparados ao grupo Salina. A análise da resposta humoral revelou razões equilibradas IgG2a/IgG1 para os grupos salina e histona + CpG contra antígenos solúveis de Leishmania (SLA), e uma resposta de perfil mais Th1 para o grupo Li \0394lpg2. Não houve diferença significativa na produção de citocinas por esplenócitos entre os grupos avaliados. CONCLUSÕES: Foi possível padronizar a produção de NLS positivas e negativas, porém essas não demonstraram um efeito adjuvante. A imunização com Li \0394lpg2 levou à proteção parcial contra o desafio por L. braziliensis e esta proteção pode estar associada a uma resposta de perfil Th1 contra SLA. | pt_BR |
Idioma | por | pt_BR |
Direito Autoral | open access | pt_BR |
Palavras-chave | Adjuvantes | pt_BR |
Palavras-chave | Nanopartículas lipídicas sólidas | pt_BR |
Palavras-chave | Histonas nucleossomais | pt_BR |
Palavras-chave | Leishmania | pt_BR |
Palavras-chave | Vacinas | pt_BR |
Título | Avaliação do papel protetor de histonas nucleossomais de Leishmania como estratégia vacinal contra a leishmaniose cutânea experimental causada por L. braziliensis | pt_BR |
Tipo do documento | Dissertation | pt_BR |
Data da defesa | 2020-09-03 | |
Instituição de defesa | Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Muniz | pt_BR |
Grau | Mestrado Acadêmico | pt_BR |
Local de defesa | Salvador, BA | pt_BR |
Programa | Programa de Pós-Graduação em Biotecnologia em Saúde e Medicina Investigativa | pt_BR |
Coorientador | Formiga, Fábio Rocha | |
Resumo em Inglês | INTRODUCTION: Vaccination is one of the most important medical interventions develop so far. Despite all the advances, there are many diseases without available vaccines. Leishmaniasis is one of them, a parasitic disease with considerable impact on public health. There is a consensus that protective immunity can be achieved through the induction of a strong cellular immune response against this parasite.Among the new vaccine available platforms for antigen presentation and the induction of such response, we can highlight new delivery systems and adjuvants. In this work, we have approached three different antigen presentation strategies to generate knowledge about the development of a vaccine against this parasite. First, we evaluated the adjuvant effect of cationic and anionic solid lipid nanoparticles (SLN) on L. infantum nucleosomal histones in murine dendritic cells (DC). Next, the protective effect of the nucleosomal histones in association with CpG ODN adjuvant or the use of knockout parasites Li \0394lpg2 were evaluated, both exploring the cutaneous model of L. braziliensis. OBJECTIVE: Assess the protective role of nucleosomal histones (H2A, H2B, H3 and H4) of L. infantum as a vaccine strategy against experimental cutaneous leishmaniasis caused by L. braziliensis. METHODS: Cationic and anionic SLN were prepared by the double emulsion method, using Precirol ATO 5 as a lipid, and chitosan as the external aqueous phase to obtain cationic NLS. The particles were analyzed by size, polydispersity index (PdI) and zeta potential by dynamic light scattering. Then, the uptake of SLN by DC and their activation were evaluated by confocal microscopy and flow cytometry, respectively. For immunization and challenge assays we have used the BALB/C ear infection model. Three immunizations doses were performed with nucleosomal histones and CpG ODN, or one immunization dose with L. infantum knockout Li \0394lpg2. After L. braziliensis challenge the course of the disease was monitored by lesion size. Ten weeks after the challenge, parasitic load, cellular and humoral immune response were evaluated. RESULTS: Negative and positive SLN were successfully formulated. These presented average sizes of 260 and 340 nm; charge of -31 and +56 mV and polydispersity indexes of 0.2 and 0.4, respectively. The uptake assays revealed low internalization loads of SLN by DC. Moreover, DC cells did not reveal an activation profile after SLN exposure. Immunization and challenge trials revealed a significant reduction in lesion size only in the group immunized with the knockout parasite Li \0394lpg2. There was also a reduction in the parasitic load on the lymph nodes of all analysed groups in comparison to control group. The analysis of the humoral response revealed a balanced IgG2a / IgG1 ratio for control and histone + CpG groups against soluble Leishmania antigens (SLA), and a more Th1 profile response for the Li \0394lpg2 and CpG control groups. No significant difference in the production of cytokines by splenocytes from different groups was observed. CONCLUSIONS: Positive and negative SLN were formulated, however, this formulation did not induce an adjuvant effect. The immunization with Li \0394lpg2 partially protects mice against L. braziliensis and this could be related to a more Th1 prone immune response induced against SLA. | pt_BR |
Afiliação | Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brasil. | pt_BR |
Palavras-chave em inglês | Adjuvants | pt_BR |
Palavras-chave em inglês | Solid lipid nanoparticles | pt_BR |
Palavras-chave em inglês | Nucleossomal Hhstones | pt_BR |
Palavras-chave em inglês | Leishmania | pt_BR |
Palavras-chave em inglês | Vaccines | pt_BR |
Membro da banca | Pinheiro, Carina Silva | |
Membro da banca | Figueiredo, Barbara de Castro Pimentel | |
Membro da banca | Tavares, Natalia Machado | |
DeCS | Adjuvantes Imunologicos | pt_BR |
DeCS | Nanopartículas | pt_BR |
DeCS | Histonas | pt_BR |
DeCS | Leishmania | pt_BR |
DeCS | Vacinas | pt_BR |
xmlui.metadata.dc.subject.ods | 03 Saúde e Bem-Estar | |