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AEROBIC TO ANAEROBIC TRANSITION IN BIOMPHALARIA GLABRATA (SAY, 1818) INFECTED WITH DIFFERENT MIRACIDIAL DOSES OF ECHINOSTOMA PARAENSEI (LIE AND BASCH, 1967) BY HIGH-PERFORMANCE LIQUID CHROMATOGRAPHY
Author
Affilliation
Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro. Instituto de Veterinária. Departamento de Parasitologia Animal. Curso de Pós-Graduação em Ciências Veterinárias. Instituto de Biologia. Departamento de Ciências Fisiológicas. Seropédica, RJ, Brasil.
Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro. Instituto de Veterinária. Departamento de Parasitologia Animal. Curso de Pós-Graduação em Ciências Veterinárias. Instituto de Biologia. Departamento de Ciências Fisiológicas. Seropédica, RJ, Brasil.
Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro. Instituto de Biologia. Departamento de Ciências Fisiológicas. Seropédica, RJ, Brasil.
Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro. Instituto de Ciências Exatas. Departamento de Química. Seropédica, RJ, Brasil.
Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro. Instituto de Ciências Exatas. Departamento de Química. Seropédica, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Biologia e Parasitologia de Mamíferos Silvestres Reservatórios. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Biologia e Parasitologia de Mamíferos Silvestres Reservatórios. Rio de Janeiro, RJ, Brasil
Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro. Instituto de Biologia. Departamento de Biologia Animal. Seropédica, RJ, Brasil.
Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro. Instituto de Veterinária. Departamento de Parasitologia Animal. Seropédica, RJ, Brasil.
Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro. Instituto de Biologia. Departamento de Ciências Fisiológicas. Seropédica, RJ, Brasil.
Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro. Instituto de Veterinária. Departamento de Parasitologia Animal. Curso de Pós-Graduação em Ciências Veterinárias. Instituto de Biologia. Departamento de Ciências Fisiológicas. Seropédica, RJ, Brasil.
Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro. Instituto de Biologia. Departamento de Ciências Fisiológicas. Seropédica, RJ, Brasil.
Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro. Instituto de Ciências Exatas. Departamento de Química. Seropédica, RJ, Brasil.
Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro. Instituto de Ciências Exatas. Departamento de Química. Seropédica, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Biologia e Parasitologia de Mamíferos Silvestres Reservatórios. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
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Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro. Instituto de Biologia. Departamento de Biologia Animal. Seropédica, RJ, Brasil.
Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro. Instituto de Veterinária. Departamento de Parasitologia Animal. Seropédica, RJ, Brasil.
Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro. Instituto de Biologia. Departamento de Ciências Fisiológicas. Seropédica, RJ, Brasil.
Abstract
The glucose content in the hemolymph and glycogen content in the digestive gland–gonad complex
(DGG) and cephalopedal mass of Biomphalaria glabrata exposed to different parasite doses (5 and 50
miracidia) of Echinostoma paraensei as well as the activity of lactate dehydrogenase were evaluated. HPLC
(high-performance liquid chromatography) analyses were also performed to determine the concentrations
of four organic acids (oxalic, succinic, pyruvic and lactic) present in the hemolymph of infected
and uninfected snails, to better understand the effect of infection on the host’s energetic/oxidative
metabolism. The snails were dissected 1–4 weeks after infection to collect the hemolymph and separate
the tissues. There was alteration in the glycemia of the snails at both parasite doses, with a significant
increase of glycemia from of the third week after infection in comparison to the control group. Changes
were also observed in the lactate dehydrogenase activity, with increased activity as the infection progressed.
In parallel, there was a decrease in the glycogen content in the storage tissues, with a markedly
greater reduction in the digestive gland–gonad complex (larval development site) in comparison with the
cephalopedal mass. Additionally, the infection by both miracidial doses resulted in an increase of oxalic
and lactic acid levels, as well as in a decline of piruvic and succinic acid levels in B. glabrata, thus explaining
the reduction of the oxidative decarboxylation rate in the tricarboxylic acid cycle and acceleration of
the anaerobic degradation of carbohydrates in the snails, through lactic fermentation, which is essential
to ensure energy supply and success of the infection.
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