Please use this identifier to cite or link to this item:
https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/18509
Type
ArticleCopyright
Restricted access
Embargo date
2030-01-01
Collections
- IOC - Artigos de Periódicos [12967]
Metadata
Show full item record
NEUTROPHIL EXTRACELLULAR TRAPS RELEASE INDUCED BY LEISHMANIA: ROLE OF PI3Kγ, ERK, PI3Kσ, PKC, AND [CA2+]
Author
Affilliation
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Microbiologia Paulo de Góes. Departamento de Imunologia. Laboratorio de Imunobiologia das Leishmanioses. Rio de Janeiro, RJ, Brasil
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Microbiologia Paulo de Góes. Departamento de Imunologia. Laboratorio de Imunobiologia das Leishmanioses. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / National Institutes of Health. National Institute of Allergy and Infectious Diseases. Bethesda, Maryland, USA.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Microbiologia Paulo de Góes. Departamento de Imunologia. Laboratorio de Imunobiologia das Leishmanioses. Rio de Janeiro, RJ, Brasil
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Laboratório de Imunobiofísica. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.,
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Microbiologia Paulo de Góes. Departamento de Imunologia. Laboratorio de Imunobiologia das Leishmanioses. Rio de Janeiro, RJ, Brasil
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Microbiologia Paulo de Góes. Departamento de Imunologia. Laboratorio de Imunobiologia das Leishmanioses. Rio de Janeiro, RJ, Brasil
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Departamento de Neurobiologia. Laboratório de Neurogênese. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Biologia Estrutural. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Laboratório de Imunobiofísica. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.,
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Microbiologia Paulo de Góes. Departamento de Imunologia. Laboratorio de Imunobiologia das Leishmanioses. Rio de Janeiro, RJ, Brasil
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Microbiologia Paulo de Góes. Departamento de Imunologia. Laboratorio de Imunobiologia das Leishmanioses. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / National Institutes of Health. National Institute of Allergy and Infectious Diseases. Bethesda, Maryland, USA.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Microbiologia Paulo de Góes. Departamento de Imunologia. Laboratorio de Imunobiologia das Leishmanioses. Rio de Janeiro, RJ, Brasil
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Laboratório de Imunobiofísica. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.,
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Microbiologia Paulo de Góes. Departamento de Imunologia. Laboratorio de Imunobiologia das Leishmanioses. Rio de Janeiro, RJ, Brasil
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Microbiologia Paulo de Góes. Departamento de Imunologia. Laboratorio de Imunobiologia das Leishmanioses. Rio de Janeiro, RJ, Brasil
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Departamento de Neurobiologia. Laboratório de Neurogênese. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Biologia Estrutural. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Laboratório de Imunobiofísica. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.,
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Microbiologia Paulo de Góes. Departamento de Imunologia. Laboratorio de Imunobiologia das Leishmanioses. Rio de Janeiro, RJ, Brasil
Abstract
Upon in vitro stimulation, neutrophils undergo a cell death named netosis. This process is characterized by extracellular release of chromatin scaffold associated with granular and cytoplasmic proteins, which together, ensnare and kill microbes. We have previously described that interaction of Leishmania amazonensis with human neutrophils leads to the release of neutrophil extracellular traps, which trap and kill the parasite. However, the signaling leading to Leishmania induced netosis is still unknown. Thus, we sought to evaluate signaling events that drive L. amazonensis induced neutrophil extracellular trap release from human neutrophils. Here, we found that PI3K, independently of protein kinase B, has a role in parasite-induced netosis. We also described that the main isoforms involved are PI3Kγ and PI3Kδ, which work in reactive oxygen species-dependent and -independent ways, respectively. We demonstrated that activation of ERK downstream of PI3Kγ is important to trigger reactive oxygen species-dependent, parasite-induced netosis. Pharmacological inhibition of protein kinase C also significantly decreased parasite-induced neutrophil extracellular trap release. Intracellular calcium, regulated by PI3Kδ, represents an alternative reactive oxygen species-independent pathway of netosis stimulated by L. amazonensis Finally, intracellular calcium mobilization and reactive oxygen species generation are the major regulators of parasite-induced netosis. Our results contribute to a better understanding of the signaling behind netosis induced by interactions between Leishmania and neutrophils.
Share