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https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/34900
OTIMIZAÇÃO DA EXTRAÇÃO DA ENZIMA ASPARAGINASE II DE SACCHAROMYCESCEREVISIAE EXPRESSA EM PICHIA PASTORIS
Souza, Natália Plinio de | Date Issued:
2019
Alternative title
Optimization of the extraction of the enzyme asparaginase II of Saccharomyces cerevisiae expressed in Pichia pastorisAuthor
Advisor
Co-advisor
Comittee Member
Affilliation
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto de Tecnologia em Fármacos. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Abstract in Portuguese
A enzima L-asparaginase é o principal medicamento biológico para tratamento da leucemia linfoblástica aguda (LLA). As formulações de L-asparaginase existentes no mercado atualmente são oriundas de sistema procariótico, Escherichia coli e Erwinia chrysanthemi; que são eficazes no tratamento de LLA, porém provocam toxicidade e reações de imunogenicidade que dificultam ou até inviabilizam o tratamento. Nestecontexto, foi estabelecido um projeto desenvolvido em parceria entre Farmanguinhos / Fiocruz e o Instituto de Química / UFRJ, que visa o desenvolvimento de um fármacoantileucêmico a partir de asparaginase de levedura, a qual possui menor potencial imunogênico devido à maior proximidade filogenética com as células humanas. Em trabalhos anteriores, o gene ASP3 que codifica a asparaginase II de Saccharomyces cerevisiae foi clonado e expresso na levedura Pichia pastoris. A extração da asparaginase periplasmática recombinante foi estudada por choque osmótico e pHalcalino usando solução de fosfato de potássio 500 mM em pH 11,5 na presença de cisteína 10 mM, na proporção de 70 mL por grama de massa celular seca, resultandoem 90% de recuperação da atividade enzimática em 2 horas de tratamento. Apesar do alto rendimento e da seletividade para a extração da asparaginase, o elevado consumo de reagentes e o pH extremamente alcalino são fatores problemáticos,especialmente quando se considera o aumento de escala do processo. O presente trabalho consistiu na otimização deste processo de extração, buscando minimizar a quantidade de insumos e o tempo reacional. Os parâmetros significativos, selecionados por planejamento fatorial fracionário entre a concentração de fosfato de potássio, concentração de cisteína e pH do meio reacional, foram otimizados por delineamento composto central. Posteriormente, o tempo de reação, temperatura e proporção de solução extratora : massa celular foram avaliados separadamente. Os extratos enzimáticos foram analisados quanto à atividade enzimática, concentração de proteína total e perfil proteico por SDS-PAGE. O planejamento experimental mostrou que as três variáveis avaliadas (concentrações de fosfato e de cisteína e pH) foram significativas para a extração da asparaginase. A otimização da solução extratora indicou como composição ótima: fosfato de potássio 500 mM, cisteína 10 mM, pH 11,2, significando uma redução de 0,3 unidades de pH em relação ao processo anteriormente desenvolvido. O tempo de extração da asparaginase foi reduzido de 120 min para 60 min. A extração pode ser realizada à temperatura ambiente, entre 25 e 28° C. A proporção de volume de solução extratora : massa celular pode ser reduzida para 17,5 mL por grama de célula seca, representando uma redução de quatro vezes em relação ao processo anterior. O processo de extração otimizado foi transposto da escala de 0,1 g de célula para 0,5 g de célula sem alterações significativas no rendimento de extração e na atividade específica do extrato bruto, indicando a reprodutibilidade do processo de extração para a faixa estudada.
Abstract
The enzyme L-asparaginase is the main biological drug for the treatment of acute
lymphoblastic leukemia (ALL). The currently available formulations of L-asparaginase
are from the prokaryotic, Escherichia coli and Erwinia chrysanthemi; which are
effective in the treatment of ALL, but cause toxici and immunogenic reactions that
hinder or even render the treatment unfeasible. In this context, a project has been
developed in partnership between Farmanguinhos / Fiocruz and the Institute of
Chemistry / UFRJ, aiming at developing an antileukemic drug from yeast
asparaginase, which has a lower immunogenic potential due to the higher
phylogenetic proximity with human cells. In previous work, the ASP3 gene encoding
Saccharomyces cerevisiae asparaginase II was cloned and expressed in the yeast
Pichia pastoris. The extraction of the recombinant periplasmic asparaginase was
studied by osmotic shock and alkaline pH using a 500 mM potassium phosphate
solution at pH 11.5 in the presence of 10 mM cysteine, at the ratio of 70 ml per gram
of dry cell mass, resulting in 90% enzymatic activity recovery in 2 hours of treatment.
Despite the high yield and selectivity for extracting asparaginase, the high reagent
consumption and extremely alkaline pH are problematic factors, especially when
considering the process scale up. The present work consists in the optimization of
this extraction process, aiming at minimizing the amount of reagents and the reaction
time. The significant parameters, selected by fractional factorial design among
phosphate and cysteine concentrations and medium pH were optimized by central
composite design. Subsequently, reaction time, temperature and extractive solution :
cell mass ratio were separately evaluated. The enzymatic extracts were analyzed for
enzymatic activity, total protein concentration and protein profile by SDS-PAGE
analysis. The experimental design showed that the three variables evaluated were
significant for asparaginase extraction. Optimization of the extractive solution
indicated as optimal composition: 500 mM potassium phosphate, 10 mM cysteine, pH
11.2, meaning a reduction of 0.3 pH units over the previously developed process.
The extraction time was reduced from 120 min to 60 min. Extraction may be
performed at room temperature, between 25 and 28 °C. The ratio of extractive
solutionvolume: cell mass may be reduced at least to 17.5 ml per gram of dry cell
mass, representing a four-fold reduction over the previous process. The optimized
extraction process was transposed from 0.1 g cell to 0.5 g cell without significant
changes in the extraction yield and the specific activity of the crude extract, indicating
the reproducibility of the extraction process for the studied range.
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