Please use this identifier to cite or link to this item:
https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/56564
Type
ArticleCopyright
Restricted access
Embargo date
2099-12-31
Collections
Metadata
Show full item record
EFFECT OF SALIVARY CYP4EM1 AND CYP4EM2 GENE SILENCING ON THE LIFE SPAN OF CHAGAS DISEASE VECTOR RHODNIUS PROLIXUS (HEMIPTERA, REDUVIIDAE) EXPOSED TO SUBLETHAL DOSE OF DELTAMETHRIN
Author
Paim, Rafaela Magalhaes Macedo
Pessoa, Grasielle Caldas D`Ávila
Nascimento, Bruno Warley Leandro do
Nascimento, Ana Mercia Dias
Pinheiro, Leticia Cavalieri
Koerich, Leonardo Barbosa
Diotaiuti, Lileia Gonçalves
Araujo, Ricardo Nascimento
Sant’Anna, Mauricio Roberto Viana
Figueiredo, Nelder Gontijo
Pereira, Mauricio Horacio
Pessoa, Grasielle Caldas D`Ávila
Nascimento, Bruno Warley Leandro do
Nascimento, Ana Mercia Dias
Pinheiro, Leticia Cavalieri
Koerich, Leonardo Barbosa
Diotaiuti, Lileia Gonçalves
Araujo, Ricardo Nascimento
Sant’Anna, Mauricio Roberto Viana
Figueiredo, Nelder Gontijo
Pereira, Mauricio Horacio
Affilliation
Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Departamento de Parasitologia. Belo Horizonte, MG, Brazil/Universidade do Estado de Minas Gerais. Divinópolis, MG, Brazil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Departamento de Parasitologia. Belo Horizonte, MG, Brazil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular. Rio de Janeiro, Rio de Janeiro, Brazil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Departamento de Parasitologia. Belo Horizonte, MG, Brazil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Departamento de Parasitologia. Belo Horizonte, MG, Brazil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto René Rachou. Belo Horizonte, MG, Brazil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Departamento de Parasitologia. Belo Horizonte, MG, Brazil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular. Rio de Janeiro, Rio de Janeiro, Brazil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto René Rachou. Belo Horizonte, MG, Brazil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Departamento de Parasitologia. Belo Horizonte, MG, Brazil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular. Rio de Janeiro, Rio de Janeiro, Brazil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Departamento de Parasitologia. Belo Horizonte, MG, Brazil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular. Rio de Janeiro, Rio de Janeiro, Brazil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Departamento de Parasitologia. Belo Horizonte, MG, Brazil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular. Rio de Janeiro, Rio de Janeiro, Brazil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Departamento de Parasitologia. Belo Horizonte, MG, Brazil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular. Rio de Janeiro, Rio de Janeiro, Brazil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Departamento de Parasitologia. Belo Horizonte, MG, Brazil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular. Rio de Janeiro, Rio de Janeiro, Brazil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Departamento de Parasitologia. Belo Horizonte, MG, Brazil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Departamento de Parasitologia. Belo Horizonte, MG, Brazil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto René Rachou. Belo Horizonte, MG, Brazil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Departamento de Parasitologia. Belo Horizonte, MG, Brazil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular. Rio de Janeiro, Rio de Janeiro, Brazil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto René Rachou. Belo Horizonte, MG, Brazil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Departamento de Parasitologia. Belo Horizonte, MG, Brazil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular. Rio de Janeiro, Rio de Janeiro, Brazil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Departamento de Parasitologia. Belo Horizonte, MG, Brazil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular. Rio de Janeiro, Rio de Janeiro, Brazil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Departamento de Parasitologia. Belo Horizonte, MG, Brazil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular. Rio de Janeiro, Rio de Janeiro, Brazil.
Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas. Departamento de Parasitologia. Belo Horizonte, MG, Brazil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular. Rio de Janeiro, Rio de Janeiro, Brazil.
Abstract
Control of Chagas disease in endemic countries is primarily accomplished through insecticide spraying for triatomine vectors. In this context, pyrethroids are the first-choice insecticide, and the evolution of insect resistance to these insecticides may represent an important barrier to triatomine control. In insects, cytochrome P450s are enzymes involved in the metabolism of xenobiotics and endogenous chemicals that are encoded by genes divided into different families. In this work, we evaluated the role of three Rhodnius prolixus CYP4EM subfamily genes during blood meal and after deltamethrin exposure. CYP4 gene members were expressed in different insect organs (integument, salivary glands (SGs), midgut, fat body and malpighian tubules) at distinct transcriptional levels. CYP4EM1 gene was highly expressed in the SG and was clearly modulated after insect blood meal. Injection of CYP4EM1dsRNA promoted significant reduction in mRNA levels of both CYP4EM1 and CYP4EM2 genes and induced deleterious effects in R. prolixus nymphs subsequently exposed to sublethal doses of deltamethrin (3.4 or 3.8 ng/nymph treated). The higher dose reduced the survival over time and increased susceptibility of R. prolixus nymphs to deltamethrin. A better understanding of this mechanism can help in developing of more efficient strategies to reduce Trypanosoma cruzi vector transmission in Americas.
Share