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A NEW STRATEGY FOR MAPPING EPITOPES OF LACK AND PEPCK PROTEINS OF LEISHMANIA AMAZONENSIS SPECIFIC FOR MAJOR HISTOCOMPATIBILITY COMPLEX CLASS I
Epítopos T
Peptídeos
Vacina
Bioinformática
HLA
H2Db
MHC I
Tetrâmero
Author
Sena, Edlainne Pinheiro Ferreira
Hardoim, Daiana de Jesus
Cardoso, Flavia de Oliveira
d’Escoffier, Luiz Ney
Soares, Isabela Ferreira
Carvalho, João Pedro Rangel da Silva
Angnes, Ricardo Almir
Fragoso, Stenio Perdigão
Alves, Carlos Roberto
De Simone, Salvatore Giovanni
Lima Junior, Josué da Costa
Bertho, Alvaro Luiz
Valle, Tânia Zaverucha do
Silva, Franklin Souza da
Calabrese, Kátia da Silva
Hardoim, Daiana de Jesus
Cardoso, Flavia de Oliveira
d’Escoffier, Luiz Ney
Soares, Isabela Ferreira
Carvalho, João Pedro Rangel da Silva
Angnes, Ricardo Almir
Fragoso, Stenio Perdigão
Alves, Carlos Roberto
De Simone, Salvatore Giovanni
Lima Junior, Josué da Costa
Bertho, Alvaro Luiz
Valle, Tânia Zaverucha do
Silva, Franklin Souza da
Calabrese, Kátia da Silva
Affilliation
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunomodulação e Protozoologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunomodulação e Protozoologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunomodulação e Protozoologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunomodulação e Protozoologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunoparasitologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Desenvolvimento Tecnológico em Saúde. Laboratório de Bioquímica de Proteínas e Peptídeos. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Instituto de Biologia Molecular do Paraná. Laboratório de Síntese Química. Curitiba. PR, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Laboratório de Biologia Molecular e Sistêmica de Tripanossomatídeos. Curitiba, PR, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Biologia Molecular e Doenças Endêmicas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Desenvolvimento Tecnológico em Saúde. Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia para Inovação em Doenças de Populações Negligenciadas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Epidemiologia e Sistemática Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Universidade Federal Fluminense. Instituto de Biologia. Departamento de Biologia Celular e Molecular. Programa de Pós-Graduação em Ciência e Biotecnologia. Niterói, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunoparasitologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunoparasitologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Plataforma de Citometria. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunomodulação e Protozoologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Desenvolvimento Tecnológico em Saúde. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Universidade Iguaçu, Dom Rodrigo, Nova Iguaçu. Faculdade de Biologia e Ciências da Saúde. Nova Iguaçu,, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunomodulação e Protozoologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunomodulação e Protozoologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunomodulação e Protozoologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunomodulação e Protozoologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunoparasitologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Desenvolvimento Tecnológico em Saúde. Laboratório de Bioquímica de Proteínas e Peptídeos. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Instituto de Biologia Molecular do Paraná. Laboratório de Síntese Química. Curitiba. PR, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Laboratório de Biologia Molecular e Sistêmica de Tripanossomatídeos. Curitiba, PR, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Biologia Molecular e Doenças Endêmicas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Desenvolvimento Tecnológico em Saúde. Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia para Inovação em Doenças de Populações Negligenciadas. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Epidemiologia e Sistemática Molecular. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Universidade Federal Fluminense. Instituto de Biologia. Departamento de Biologia Celular e Molecular. Programa de Pós-Graduação em Ciência e Biotecnologia. Niterói, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunoparasitologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunoparasitologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Plataforma de Citometria. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunomodulação e Protozoologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Desenvolvimento Tecnológico em Saúde. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Universidade Iguaçu, Dom Rodrigo, Nova Iguaçu. Faculdade de Biologia e Ciências da Saúde. Nova Iguaçu,, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunomodulação e Protozoologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Abstract
Leishmaniasis represents a complex of diseases with a broad clinical spectrum and epidemiological
diversity, considered a major public health problem. Although there is treatment, there are
still no vaccines for cutaneous leishmaniasis. Because Leishmania spp. is an intracellular protozoan
with several escape mechanisms, a vaccine must provoke cellular and humoral immune responses.
Previously, we identified the Leishmania homolog of receptors for activated C kinase (LACK) and
phosphoenolpyruvate carboxykinase (PEPCK) proteins as strong immunogens and candidates for the
development of a vaccine strategy. The present work focuses on the in silico prediction and characterization
of antigenic epitopes that might interact with mice or human major histocompatibility complex
class I. After immunogenicity prediction on the Immune Epitope Database (IEDB) and the Database of
MHC Ligands and Peptide Motifs (SYFPEITHI), 26 peptides were selected for interaction assays with
infected mouse lymphocytes by flow cytometry and ELISpot. This strategy identified nine antigenic
peptides (pL1-H2, pPL3-H2, pL10-HLA, pP13-H2, pP14-H2, pP15-H2, pP16-H2, pP17-H2, pP18-H2,
pP26-HLA), which are strong candidates for developing a peptide vaccine against leishmaniasis.
Keywords in Portuguese
Leishmaniose cutâneaEpítopos T
Peptídeos
Vacina
Bioinformática
HLA
H2Db
MHC I
Tetrâmero
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