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2030-12-31
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PROTEOMICS OF SERUM-DERIVED EXTRACELLULAR VESICLES ARE ASSOCIATED WITH THE SEVERITY AND DIFFERENT CLINICAL PROFILES OF PATIENTS WITH COVID-19: AN EXPLORATORY SECONDARY ANALYSIS
Vesículas extracelulares
Espectrometria de massa
Desgranulação plaquetária
Proteoma
SARS-CoV-2
Extracellular vesicles
Mass spectrometry
Platelet degranulation
Proteome
SARS-CoV-2
Author
Affilliation
Centro Nacional de Pesquisa em Energia e Materiais. Laboratório Nacional de Biociências. Campinas, SP, Brasil.
Centro Nacional de Pesquisa em Energia e Materiais. Laboratório Nacional de Biociências. Campinas, SP, Brasil.
Centro Nacional de Pesquisa em Energia e Materiais. Laboratório Nacional de Biociências. Campinas, SP, Brasil.
Centro Nacional de Pesquisa em Energia e Materiais. Laboratório Nacional de Biociências. Campinas, SP, Brasil.
Centro Nacional de Pesquisa em Energia e Materiais. Laboratório Nacional de Biociências. Campinas, SP, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Laboratório de Investigação Pulmonar. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia de Medicina Regenerativa. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado do Rio de Janeiro. Rede Rio de Janeiro de Inovação em Nanossistemas para Saúde-NanoSaúde. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Laboratório de Investigação Pulmonar. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia de Medicina Regenerativa. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado do Rio de Janeiro. Rede Rio de Janeiro de Inovação em Nanossistemas para Saúde-NanoSaúde. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brasil / Instituto D'Or de Pesquisa e Ensino (IDOR). Salvador, BA, Brasil / Hospital São Rafael. Centro de Biotecnologia e Terapia Celular. Salvador, BA, Brasil.
The Keenan Research Centre for Biomedical Science of St. Michael's Hospital. Toronto, Ontario, Canada / Institute of Medical Sciences and Interdepartmental Division of Critical Care. Faculty of Medicine. University of Toronto. Toronto, Ontario, Canada.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunofarmacologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
AAC&T Pesquisa Consultoria LTDA. Curitiba, PR, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Laboratório de Investigação Pulmonar. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Biosystems & Integrative Sciences Institute. Faculty of Sciences. University of Lisbon. Lisbon, Portugal.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Laboratório de Investigação Pulmonar. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia de Medicina Regenerativa. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado do Rio de Janeiro. Rede Rio de Janeiro de Inovação em Nanossistemas para Saúde-NanoSaúde. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Centro Nacional de Pesquisa em Energia e Materiais. Laboratório Nacional de Biociências. Campinas, SP, Brasil.
Centro Nacional de Pesquisa em Energia e Materiais. Laboratório Nacional de Biociências. Campinas, SP, Brasil.
Centro Nacional de Pesquisa em Energia e Materiais. Laboratório Nacional de Biociências. Campinas, SP, Brasil.
Centro Nacional de Pesquisa em Energia e Materiais. Laboratório Nacional de Biociências. Campinas, SP, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Laboratório de Investigação Pulmonar. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia de Medicina Regenerativa. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado do Rio de Janeiro. Rede Rio de Janeiro de Inovação em Nanossistemas para Saúde-NanoSaúde. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Laboratório de Investigação Pulmonar. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia de Medicina Regenerativa. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado do Rio de Janeiro. Rede Rio de Janeiro de Inovação em Nanossistemas para Saúde-NanoSaúde. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Gonçalo Moniz. Salvador, BA, Brasil / Instituto D'Or de Pesquisa e Ensino (IDOR). Salvador, BA, Brasil / Hospital São Rafael. Centro de Biotecnologia e Terapia Celular. Salvador, BA, Brasil.
The Keenan Research Centre for Biomedical Science of St. Michael's Hospital. Toronto, Ontario, Canada / Institute of Medical Sciences and Interdepartmental Division of Critical Care. Faculty of Medicine. University of Toronto. Toronto, Ontario, Canada.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Oswaldo Cruz. Laboratório de Imunofarmacologia. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
AAC&T Pesquisa Consultoria LTDA. Curitiba, PR, Brasil.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Laboratório de Investigação Pulmonar. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Biosystems & Integrative Sciences Institute. Faculty of Sciences. University of Lisbon. Lisbon, Portugal.
Universidade Federal do Rio de Janeiro. Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho. Laboratório de Investigação Pulmonar. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia de Medicina Regenerativa. Rio de Janeiro, RJ, Brasil / Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado do Rio de Janeiro. Rede Rio de Janeiro de Inovação em Nanossistemas para Saúde-NanoSaúde. Rio de Janeiro, RJ, Brasil.
Abstract
Background aims: Coronavirus disease 2019 (COVID-19) is characterized by a broad spectrum of clinical manifestations with the potential to progress to multiple organ dysfunction in severe cases. Extracellular vesicles (EVs) carry a range of biological cargoes, which may be used as biomarkers of disease state. Methods: An exploratory secondary analysis of the SARITA-2 and SARITA-1 datasets (randomized clinical trials on patients with mild and moderate/severe COVID-19) was performed. Serum-derived EVs were used for proteomic analysis to identify enriched biological processes and key proteins, thus providing insights into differences in disease severity. Serum-derived EVs were separated from patients with COVID-19 by size exclusion chromatography and nanoparticle tracking analysis was used to determine particle concentration and diameter. Liquid chromatography coupled with tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) was performed to identify and quantify protein signatures. Bioinformatics and multivariate statistical analysis were applied to distinguish candidate proteins associated with disease severity (mild versus moderate/severe COVID-19). Results: No differences were observed in terms of the concentration and diameter of enriched EVs between mild (n = 14) and moderate/severe (n = 30) COVID-19. A total of 414 proteins were found to be present in EVs, of which 360 were shared while 48 were uniquely present in severe/moderate compared to mild COVID-19. The main biological signatures in moderate/severe COVID-19 were associated with platelet degranulation, exocytosis, complement activation, immune effector activation, and humoral immune response. Von Willebrand factor, serum amyloid A-2 protein, histone H4 and H2A type 2-C, and fibrinogen β-chain were the most differentially expressed proteins between severity groups. Conclusion: Exploratory proteomic analysis of serum-derived EVs from patients with COVID-19 detected key proteins related to immune response and activation of coagulation and complement pathways, which are associated with disease severity. Our data suggest that EV proteins may be relevant biomarkers of disease state and prognosis.
Keywords in Portuguese
BiomarcadoresVesículas extracelulares
Espectrometria de massa
Desgranulação plaquetária
Proteoma
SARS-CoV-2
Keywords
BiomarkersExtracellular vesicles
Mass spectrometry
Platelet degranulation
Proteome
SARS-CoV-2
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