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https://www.arca.fiocruz.br/handle/icict/67019
PERFIL DIFERENCIAL DO MICOBIOMA AÉREO CAPTURADO POR AERONAVE NÃO TRIPULADA EM AMBIENTE FLORESTAL E URBANO
Lucena, André Silva Lira de | Date Issued:
2024
Author
Advisor
Co-advisor
Affilliation
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Aggeu Magalhães. Recife, PE, Brasil.
Abstract in Portuguese
Comunidades de microrganismos (microbiomas) habitam todos os ambientes da Terra, mas a maioria das espécies não pode ser cultivada em meios tradicionais, dificultando sua análise. O avanço das técnicas de Sequenciamento de Alto Rendimento (HTS) e bioinformática permitiram o desenvolvimento de abordagens independentes de cultivo, como o sequenciamento de amplicons, que viabiliza a análise de múltiplos microrganismos ao mesmo tempo, possibilitando uma descrição mais fidedigna dos microbiomas. Porém, o microbioma aéreo, especialmente sua fração fúngica (micobioma), ainda é pouco estudado devido à dificuldade na coleta,que envolve baixa biomassa microbiana, que exige a filtragem de muitos litros de ar por equipamentos pesados e de pouca mobilidade, limitando as possibilidades de altitude e locais de coleta. Portanto, é necessário desenvolver métodos de coleta de ar com equipamentos mais versáteis. Aqui, buscamos desenvolver e avaliar uma metodologia de coleta com dispositivo coletor de ar projetado para uso em drones para estudo do micobioma aéreo. Foram testadas duas versões do coletor (V1 e V2) e três meios de coleta: solução PBS e matrizes gelatinosas não nutritiva (ANN) e nutritiva (ALB). O coletor V1, baseado apenas em sucção passiva, foi testado acoplado ao drone a 20 e 50 metros de altitude. Já o coletor V2, acrescido de mecanismos de Sucção Ativa (MSA) e de Controle da Entrada de Ar (MCEA), foi avaliado apenas estaticamente ou acoplado a um carro, devido a problemas técnicos no uso com o drone. Esses dispositivos foram comparados a uma metodologia de coleta com bomba de sucção tradicional. As amostras coletadas nos diferentes experimentos realizados foram processadas para extração do DNA, que foi amplificado e sequenciado para análise da região ITS1. De modo geral, as amostras coletadas apresentaram baixa concentração de DNA (0 – 1 ng/μL), quando não pré-cultivadas em meio nutritivo. O coletor V1 demonstrou susceptibilidade à contaminação durante a coleta, como evidenciado pela presença de amplificação nas amostras de controle após a PCR. Em contraste, o MCEA implementado no coletor V2 foi eficaz na redução desse problema, com uma média de sete vezes menos colônias nas amostras do coletor V2 com o duto de ar fechado pelo MCEA. No entanto, o MSA, também incorporado ao V2, necessita de otimização, pois, quando testado isoladamente, não demonstrou eficiência na amostragem, como evidenciado pelas concentrações indetectáveis de DNA e ausência de amplificação nas amostras obtidas durante uma coleta estática e sem acoplamento ao drone. Quanto aos meios de coleta, o ANN foi mais eficiente do que o PBS em capturar microrganismos, provavelmente devido a sua superfície de contato 13 vezes maior que a proporcionada pela solução com PBS. A metodologia com bomba de sucção a vácuo mostrou eficácia limitada (concentração de DNA indetectável), e maior ocorrência de contaminação se comparada às amostras do coletor V2. Nesse sentido, somado ao meio ANN, o coletor V2, com as devidas otimizações necessárias, é promissor para a amostragem do micobioma aéreo .
Abstract
Microorganism communities (microbiomes) inhabit all environments on Earth, but most species cannot be cultivated in traditional media, making their analysis difficult. The advancement of High-Throughput Sequencing (HTS) techniques and bioinformatics has enabled the development of cultivation-independent approaches, such as amplicon sequencing, which allows the simultaneous analysis of multiple microorganisms, providing a more accurate description of microbiomes. However, the airborne microbiome, particularly its fungal fraction (mycobiome), is still understudied due to the challenges in sampling, which involve low microbial biomass that requires filtering many liters of air using heavy, low-mobility equipment, limiting the altitude and location options for sampling. Therefore, it is necessary to develop more versatile air sampling methods. Here, we aim to develop and evaluate an air sampling methodology with a device designed for drone use to study the airborne mycobiome. Two versions of the air collector (V1 and V2) and three collection media were tested: PBS solution and gelatinous non-nutritive (ANN) and nutritive (ALB) matrices. The V1, based solely on passive suction, was tested attached to the drone at 20 and 50 meters of altitude. The V2, equipped with Active Suction Mechanisms (MSA) and Air Inlet Control (MCEA), was evaluated statically or attached to a car due to technical issues when using it with the drone. These devices were compared to a traditional suction pump sampling method. The samples collected in the different experiments were processed for DNA extraction, which was amplified and sequenced for ITS1 region analysis. Overall, the collected samples showed low DNA concentration (0 – 1 ng/μL) when not pre-cultivated in nutritive media. The V1 collector showed susceptibility to contamination during sampling, as evidenced by the presence of amplification in the control samples after PCR. In contrast, the MCEA implemented in the V2 collector was effective in reducing this problem, resulting in an average of seven times fewer colonies in the V2 samples with the air duct closed by the MCEA. However, the MSA, also incorporated into the V2, requires optimization, as it did not demonstrate sampling efficiency when tested in isolation, as evidenced by undetectable DNA concentrations and the absence of amplification in samples obtained during static collection without using the drone. Regarding the collection media, ANN was more efficient than PBS in capturing microorganisms, likely due to its contact surface being 13 times larger than that provided by the PBS solution. The vacuum suction pump method showed limited effectiveness (undetectable DNA concentration) and higher contamination compared to the V2 samples. In this context, combined with the ANN medium, the V2 collector, with the necessary optimizations, shows promise for airborne mycobiome sampling.
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