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Sustainable Development Goals
03 Saúde e Bem-EstarCollections
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PATHOLOGICAL FINDINGS AND MORPHOLOGIC CORRELATION OF THE LUNGS OF AUTOPSIED PATIENTS WITH SARS-COV-2 INFECTION IN THE BRAZILIAN AMAZON USING TRANSMISSION ELECTRON MICROSCOPY
Severe Acute Respiratory Syndrome
Lung Diseases
Electron Microscopy
Alveolar Epithelial Cells
Postmortem evidence
Síndrome Respiratorio Agudo Grave
Enfermedades Pulmonares
Microscopía Electrónica
Células Epiteliales Alveolares
Síndrome Respiratória Aguda Grave
Pneumopatias
Microscopia Eletrônica
Células Epiteliais Alveolares
Necrópsia
Author
Santana, Monique Freire
Pinto, Rebecca Augusta de Araújo
Marcon, Bruna Hilzendeger
Medeiros, Lia Carolina Soares
Morais, Thiago Barros do Nascimento de
Dias, Lucas Castanhola
Souza, Lorenna Pereira de
Melo, Gisely Cardoso de
Monteiro, Wuelton Marcelo
Lacerda, Marcus Vinicius Guimarães
Val, Fernando Almeida
Lalwani, Pritesh Jaychand
Ferreira, Luiz Carlos de Lima
Pinto, Rebecca Augusta de Araújo
Marcon, Bruna Hilzendeger
Medeiros, Lia Carolina Soares
Morais, Thiago Barros do Nascimento de
Dias, Lucas Castanhola
Souza, Lorenna Pereira de
Melo, Gisely Cardoso de
Monteiro, Wuelton Marcelo
Lacerda, Marcus Vinicius Guimarães
Val, Fernando Almeida
Lalwani, Pritesh Jaychand
Ferreira, Luiz Carlos de Lima
Affilliation
Fundação Centro de Controle de Oncologia do Estado do Amazonas. Departamento de Ensino e Pesquisa. Manaus, AM, Brasil. / Universidade do Estado do Amazonas. Programa de Pós-Graduação em Medicina Tropical. Manaus, AM, Brasil. / Fundação de Medicina Tropical Dr. Heitor Vieira Dourado. Manaus, AM, Brasil.
Hospital Universitário Getúlio Vargas. Programa de Residência Médica em Patologia. Manaus, AM, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Curitiba, PR, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Curitiba, PR, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto de Pesquisas Leônidas & Maria Deane. Manaus, AM, Brasil.
Instituto Nacional de Pesquisas da Amazônia. Laboratório Temático de Microscopia e Nanotecnologia. Manaus, AM, Brasil.
Fundação de Medicina Tropical Dr. Heitor Vieira Dourado. Manaus, AM, Brasil.
Fundação de Medicina Tropical Dr. Heitor Vieira Dourado. Manaus, AM, Brasil.
Fundação de Medicina Tropical Dr. Heitor Vieira Dourado. Manaus, AM, Brasil.
Universidade do Estado do Amazonas. Programa de Pós-Graduação em Medicina Tropical. Manaus, AM, Brasil. / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Curitiba, PR, Brasil.
Universidade do Estado do Amazonas. Programa de Pós-Graduação em Medicina Tropical. Manaus, AM, Brasil. / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Curitiba, PR, Brasil. / Universidade Federal do Amazonas. Programa de Pós-Graduação em Ciências da Saúde. Manaus, AM, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto de Pesquisas Leônidas & Maria Deane. Manaus, AM, Brasil.
Universidade do Estado do Amazonas. Programa de Pós-Graduação em Medicina Tropical. Manaus, AM, Brasil. / Fundação de Medicina Tropical Dr. Heitor Vieira Dourado. Manaus, AM, Brasil. / Hospital Universitário Getúlio Vargas. Programa de Residência Médica em Patologia. Manaus, AM, Brasil. / Universidade Federal do Amazonas. Programa de Pós-Graduação em Ciências da Saúde. Manaus, AM, Brasil.
Hospital Universitário Getúlio Vargas. Programa de Residência Médica em Patologia. Manaus, AM, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Curitiba, PR, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Curitiba, PR, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto de Pesquisas Leônidas & Maria Deane. Manaus, AM, Brasil.
Instituto Nacional de Pesquisas da Amazônia. Laboratório Temático de Microscopia e Nanotecnologia. Manaus, AM, Brasil.
Fundação de Medicina Tropical Dr. Heitor Vieira Dourado. Manaus, AM, Brasil.
Fundação de Medicina Tropical Dr. Heitor Vieira Dourado. Manaus, AM, Brasil.
Fundação de Medicina Tropical Dr. Heitor Vieira Dourado. Manaus, AM, Brasil.
Universidade do Estado do Amazonas. Programa de Pós-Graduação em Medicina Tropical. Manaus, AM, Brasil. / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Curitiba, PR, Brasil.
Universidade do Estado do Amazonas. Programa de Pós-Graduação em Medicina Tropical. Manaus, AM, Brasil. / Fundação Oswaldo Cruz. Instituto Carlos Chagas. Curitiba, PR, Brasil. / Universidade Federal do Amazonas. Programa de Pós-Graduação em Ciências da Saúde. Manaus, AM, Brasil.
Fundação Oswaldo Cruz. Instituto de Pesquisas Leônidas & Maria Deane. Manaus, AM, Brasil.
Universidade do Estado do Amazonas. Programa de Pós-Graduação em Medicina Tropical. Manaus, AM, Brasil. / Fundação de Medicina Tropical Dr. Heitor Vieira Dourado. Manaus, AM, Brasil. / Hospital Universitário Getúlio Vargas. Programa de Residência Médica em Patologia. Manaus, AM, Brasil. / Universidade Federal do Amazonas. Programa de Pós-Graduação em Ciências da Saúde. Manaus, AM, Brasil.
Abstract
Electron microscopy (EM) is a rapid and effective tool that can be used to create images of a whole spectrum of virus-host interactions and, as such, has long been used in the discovery and description of viral mechanisms. Methods: Electron microscopy was used to evaluate the pulmonary pathologies of postmortem lung sections from three patients who died from infection with SARS-associated coronavirus 2 (SARS-CoV-2), a new member of the Coronaviridae family. Results: Diffuse alveolar damage (DAD) was predominant in all three patients. The early exudative stage was characterized principally by edema and extravasation of red blood cells into the alveolar space with injury to the alveolar epithelial cells; this was followed by detachment, apoptosis, and necrosis of type I and II pneumocytes. The capillaries exhibited congestion, exposure of the basement membrane from denuded endothelial cells, platelet adhesion, fibrin thrombi, and rupture of the capillary walls. The proliferative stage was characterized by pronounced proliferation of type II alveolar pneumocytes and multinucleated giant cells. The cytopathic effect of SARS-CoV-2 was observed both in degenerated type II pneumocytes and freely circulating in the alveoli, with components from virions, macrophages, lymphocytes, and cellular debris. Conclusions: Viral particles consistent with the characteristics of SARS-CoV-2 were observed mainly in degenerated pneumocytes, in the endothelium, or freely circulating in the alveoli. In the final stage of illness, the alveolar spaces were replaced by fibrosis.
Keywords
Coronavirus InfectionsSevere Acute Respiratory Syndrome
Lung Diseases
Electron Microscopy
Alveolar Epithelial Cells
Postmortem evidence
Keywords in Spanish
Infecciones por CoronavirusSíndrome Respiratorio Agudo Grave
Enfermedades Pulmonares
Microscopía Electrónica
Células Epiteliales Alveolares
DeCS
Infecções por CoronavirusSíndrome Respiratória Aguda Grave
Pneumopatias
Microscopia Eletrônica
Células Epiteliais Alveolares
Necrópsia
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